Candida auris exhibits high-level resistance to amphotericin B (AmB). Mechanisms such as ergosterol biosynthesis malfunction, oxidative damage mismanagement, and increased drug efflux contribute to AmB resistance in C. auris. In this study, we experimentally evolved two East Asian drug-susceptible clade II isolates of C. auris (P2428 and CBS10913T) isolated from different geographical locations to develop resistance against AmB. We analysed alterations in karyotype, genome sequence, and gene expression profiles to uncover the mechanisms driving AmB resistance. The independently evolved clade II adaptors displayed up to 4-16-fold higher MIC50, as compared to the parental cells. AOX2 (alternative oxidase) and the cell wall integrity pathway have been identified as critical in the development of AmB resistance. However, we noted certain intra-clade heterogeneity in the associated mechanisms. While in P2428 adaptors (P-lines), the ergosterol and sphingolipid pathways appear to play a crucial role, this was not the case for CBS10913T adaptors (A-lines), which acquired resistance independent of lipid-associated changes. The transcriptomic, WGS, and phenotypic analyses also confirm that the evolved AmB-resistant isolates follow distinct trajectories for adaptation, Furthermore, unlike the fluconazole-resistant isolates, as reported previously, changes in ploidy do not seem to contribute to the differential mechanisms of AmB resistance. Overall, this study not only provides insights into the mechanisms and pathways involved in AmB resistance but also highlights intra-clade-heterogeneity that exists within clade II of C. auris.

Abstract Reduced sensitivity of the human malaria parasite, Plasmodium falciparum, to Artemisinin and its derivatives (ARTs) threatens the global efforts towards eliminating malaria. ARTs have been shown to cause ubiquitous cellular and genetic insults, which results in the activation of the unfolded protein response (UPR) pathways. The UPR restores protein homeostasis, which otherwise would be toxic to cellular survival. Here, we interrogated the role of DNA-damage inducible protein 1 ( Pf Ddi1), a unique proteasome-interacting retropepsin in mediating the actions of the ARTs. We demonstrate that Pf Ddi1 is an active A 2 family protease that hydrolyzes ubiquitinated substrates. We further show that treatment with ARTs lead to the accumulation of ubiquitinated proteins in the parasites and blocks the destruction of the ubiquitinated substrates by Pf Ddi1. Besides, whereas the Pf Ddi1 is predominantly localised in the cytoplasm, exposure of the parasites to ARTs leads to DNA fragmentation and increased recruitment of the Pf Ddi1 into the nucleus. Furthermore, Ddi1 knock-out Saccharomyces cerevisiae cells are more suceptible to ARTs and the Pf DdI1 protein robustly restores the corresponding functions in the knock-out cells. Together, these results show that ARTs act by inducing DNA and protein damage, and impairing the damage recovery by inhibiting the activity of Pf Ddi1, an essential ubiquitin-proteasome retropepsin.

To assess the functional relevance of a putative Major Facilitator Superfamily protein (PF3D7_0210300; '