Although it is generally accepted that cellular differentiation requires changes to transcriptional networks, dynamic regulation of promoters and enhancers at specific sets of genes has not been previously studied en masse. Exploiting the fact that active promoters and enhancers are transcribed, we simultaneously measured their activity in 19 human and 14 mouse time courses covering a wide range of cell types and biological stimuli. Enhancer RNAs, then messenger RNAs encoding transcription factors, dominated the earliest responses. Binding sites for key lineage transcription factors were simultaneously overrepresented in enhancers and promoters active in each cellular system. Our data support a highly generalizable model in which enhancer transcription is the earliest event in successive waves of transcriptional change during cellular differentiation or activation.

Although the pathogenesis of hidradenitis suppurativa (HS) remains enigmatic, several factors point to potential involvement of the cutaneous microbiome. Insight into the cutaneous microbiome in HS using next-generation sequencing may provide novel data on the microbiological diversity of the skin.To investigate the follicular skin microbiome in patients with HS and in healthy controls.This case-control study obtained punch biopsy specimens from patients with HS (lesional and nonlesional) and healthy controls between October 1, 2014, and August 1, 2016. Data were analyzed from March to November 2016. Patients with HS were recruited from the Department of Dermatology, Zealand University Hospital, Roskilde, Denmark. Biopsy specimens were analyzed at the Department of Microbiology and Infection Control, Statens Serum Institut, Copenhagen, Denmark. None of the participants received any antibiotics (systemic or topical therapy) within 1 month before the study. In patients with HS, biopsy specimens were obtained from lesional skin (axilla or groin) and nonlesional skin. Only nodules containing at least 1 visible hair follicle were biopsied. Biopsy specimens from healthy controls were obtained from the axilla only.The different microbiomes were investigated using next-generation sequencing targeting 16S and 18S ribosomal RNA.The skin microbiome was characterized in 30 patients with HS (mean [SD] age, 46.9 [14.0] years; 19 [63% female]) and 24 healthy controls (mean [SD] age, 32.2 [12.0] years; 13 [54% female]). The next-generation sequencing data provided a previously unreported (to our knowledge) characterization of the skin microbiome in HS. The study demonstrated that the microbiome in HS differs significantly from that in healthy controls in lesional and nonlesional skin. Overall, the following 5 microbiome types were identified: Corynebacterium species (type I), Acinetobacter and Moraxella species (type II), Staphylococcus epidermidis (type III), Porphyromonas and Peptoniphilus species (type IV), and Propionibacterium acnes (type V). In lesional skin, microbiome types consisted predominantly of type I or type IV. Microbiome type IV was not detected in healthy controls. Several taxa, including Propionibacterium, showed a significantly higher relative abundance in healthy controls vs HS skin, indicating that Propionibacterium may be part of the pathogenesis in HS.The study findings suggest a link between a dysbiotic cutaneous microbiome and HS.

Escherichia coli sequence type 131 (ST131) is a major cause of urinary and bloodstream infections and its association with extended-spectrum β-lactamases (ESBL) significantly complicates treatment. Most notorious is its rapidly expanding H30-Rx clade (named for containing allele 30 of the type-1 fimbrial adhesin gene fimH and extensive antimicrobial resistance), which appears to have emerged in the United States due in part due to the acquisition of the ESBL-encoding blaCTX-M-15 gene and resistance to fluoroquinolones. However, non-H30 ST131 lineages with acquired CTX-M-type resistance genes also are emerging. Based on whole-genome analyses, we describe here the presence of an (fimH) H27 E. coli ST131 lineage that currently is causing an outbreak of community-acquired bacteremia and recurrent urinary tract infections (UTIs) in Denmark. This lineage has acquired both a virulence plasmid (pAA) that defines the enteroaggregative E. coli (EAEC) diarrheagenic pathotype and multiple genes associated with extraintestinal E. coli (ExPEC) that combined has made this particular ST131 lineage highly successful at colonizing its human host and cause recurrent UTI. Moreover, using a historic World Health Organization E. coli collection and publically available genome sequences, we identify a global H27 EAEC ST131 lineage dating back as far as 1998. Most H27 EAEC ST131 isolates harbor pAA or pAA-like plasmids, which analysis strongly imply was caused by a single ancestral acquisition. These findings illustrate the profound plasticity of this important pathogenic E. coli H27 lineage in general, and the genetic acquisitions of EAEC-specific virulence traits that likely confer an enhanced ability to cause intestinal colonization.