ABSTRACT Acute myeloid leukemias (AML) are comprised of multiple cell types with distinct capabilities to propagate the disease and resist therapy. Approximately 20% of AML patients carry gain- of-function mutations in IDH1 or IDH2 that result in over-production of the onco-metabolite 2-HG. Although IDH inhibitors can induce complete morphological remission, almost all patients eventually relapse. Analysis of clinical samples suggests that a population of IDH mutant cells is able to persist during treatment eventually acquiring 2-HG independence and drug resistance. Herein we characterized the molecular and cellular responses to the clinical IDH1 inhibitor AG-120 at high resolution using a novel multi-allelic mouse model of IDH1 mutant AML. We demonstrate that AG-120 exerts cell type-dependent effects on leukemic cells promoting delayed disease regression. Although IDH1 inhibition alone was not able to fully eradicate the disease, we uncovered that it increases cycling of rare leukemic stem cells and triggers transcriptional upregulation of the pyrimidine salvage pathway. Accordingly, AG-120 sensitized IDH1 mutant AML to azacitidine with the combination of AG-120 and azacitidine showing vastly improved efficacy in vivo. Our data highlight the impact of non- genetic heterogeneity on treatment response and provide mechanistic rationale for a drug combination that is being tested in clinical trials. STATEMENT OF SIGNIFICANCE Inhibition of mutant IDH1 in AML is insufficient to eliminate the disease but promotes proliferation of quiescent leukemic stem cells. Our data provide a mechanistic explanation for the observed synergy between IDH inhibitors and azacitidine and suggest that IDH inhibitors may also synergize with other drugs that preferentially target actively dividing cells.

ABSTRACT Pharmacological inhibition of epigenetic enzymes can have therapeutic benefit, particularly against hematological malignancies. While these agents can affect tumor cell growth and proliferation, recent studies have demonstrated that pharmacological de-regulation of epigenetic modifiers may additionally mediate anti-tumor immune responses. Here we discovered a novel mechanism of immune regulation through the inhibition of histone deacetylases (HDACs). In a genetically engineered model of t(8;21) AML, leukemia cell differentiation and therapeutic benefit mediated by the HDAC inhibitor panobinostat required activation of the type I interferon (IFN) signaling pathway. Plasmacytoid dendritic cells (pDCs) were identified as the cells producing type I IFN in response to panobinostat, through transcriptional activation of IFN genes concomitant with increased H3K27 acetylation at these loci. Depletion of pDCs abrogated panobinostat-mediated activation of type I IFN signaling in leukemia cells and impaired therapeutic efficacy, while combined treatment of panobinostat and recombinant IFNα improved therapeutic outcomes. These discoveries offer a new therapeutic approach for t(8;21) AML and demonstrate that epigenetic rewiring of pDCs enhances anti-tumor immunity, opening the possibility of exploiting this cell type as a new target for immunotherapy.