Abstract Cilia and flagella are ancient structures that achieve controlled motor functions through the coordinated interaction of structures including dynein arms, radial spokes (RSs), microtubules, and the dynein regulatory complex (DRC). RSs facilitate the beating motion of these organelles by mediating signal transduction between dyneins and a central pair (CP) of singlet microtubules. RS complex isolation from Chlamydomonas axonemes enabled the detection of 23 different proteins (RSP1-23), with the roles of RSP13, RSP15, RSP18, RSP19, and RSP21 remained poorly understood. Herein, we show that Lrrc23 is an evolutionarily conserved testis-enriched gene encoding an RSP15 homolog in mice. Through immunoelectron microscopy, we demonstrate that LRRC23 localizes to the RS complex within murine sperm flagella. We further found that LRRC23 was able to interact with RSHP9 and RSPH3A/B. The knockout of Lrrc23 resulted in RS disorganization and impaired motility in murine spermatozoa, whereas the ciliary beating was unaffected by the loss of this protein. Spermatozoa lacking LRRC23 were unable to efficiently pass through the uterotubal junction and exhibited defective zona penetration. Together these data indicate that LRRC23 is a key regulator underpinning the integrity of RS complex within the flagella of mammalian spermatozoa, whereas it is dispensable in cilia. Author summary

Abstract Meiosis is a cell division process with complex chromosome events where various molecules must work in tandem. To find meiosis-related genes, we screened evolutionarily conserved and reproductive tract-enriched genes using the CRISPR/Cas9 system and identified potassium channel tetramerization domain containing 19 ( Kctd19 ) as an essential factor for meiosis. In prophase I, Kctd19 deficiency did not affect synapsis or the DNA damage response, and chiasma structures were also observed in metaphase I spermatocytes of Kctd19 KO mice. However, spermatocytes underwent apoptotic elimination during the metaphase-anaphase transition. We were able to rescue the Kctd19 KO phenotype with an epitope-tagged Kctd19 transgene. Immunoprecipitation-mass spectrometry identified zinc finger protein 541 (ZFP541) and histone deacetylase 1 (HDAC1) as binding partners of KCTD19, indicating that KCTD19 is involved in chromatin modification. Phenotyping of Zfp541 KO spermatocytes demonstrated XY chromosome asynapsis and recurrent DNA damage in the late pachytene stage, leading to apoptosis. In summary, our study reveals that KCTD19 associates with ZFP541 and HDAC1, and that both KCTD19 and ZFP541 were essential for meiotic exit in male mice. Author summary Meiosis is a fundamental process that consisting of one round of genomic DNA replication and two rounds of chromosome segregation producing four haploid cells. To properly distribute their genetic material, cells need to undergo complex chromosome events such as a physical linkage of homologous chromosomes (termed synapsis) and meiotic recombination. The molecules involved in these events have not been fully characterized yet, especially in mammals. Using a CRISPR/Cas9-screening system, we identified the potassium channel tetramerization domain containing 19 ( Kctd19 ) as an essential factor for meiosis in male mice. Further, we identified zinc finger protein 541 (ZFP541) and histone deacetylase 1 (HDAC1) as binding partners of KCTD19. By observing meiosis of Zfp541 knockout germ cells, we found that Zfp541 was also essential for meiotic completion. These results show that the KCTD19/ZFP541 complex plays a critical role and is indispensable for male meiosis and fertility.

Summary Alport syndrome is an inherited chronic human kidney disease, characterized by glomerular basement membrane abnormalities. This disease is caused by mutations in COL4A3, COL4A4 , or COL4A5 gene. The knockout mice for Col4α3, Col4α4 , and Col4α5 are developed and well characterized for the study of Alport syndrome. However, disease progression and effects of pharmacological therapy depend on the genetic variability. This model is reliable only to mice. Therefore in this study, we created a novel Alport syndrome rat model utilizing rGONAD technology. Col4α5 deficient rats showed hematuria, proteinuria, high levels of BUN, Cre, and then died at 18 to 28 weeks of age (Hemizygous mutant males). Histological and ultrastructural analyses displayed the abnormalities including parietal cell hyperplasia, mesangial sclerosis, and interstitial fibrosis. Then, we demonstrated that α3/α4/α5 (IV) and α5/α5/α6 (IV) chains of type IV collagen disrupted in the Col4α5 deficient rats. Moreover, immunofluorescence analyses revealed that some glomeruli of Col4α5 mutant rats were found to be disrupted from postnatal day 0. Thus, Col4α5 mutant rat is a reliable candidate for Alport syndrome model for underlying the mechanism of renal diseases and further identifying potential therapeutic targets for human renal diseases.

Renal fibrosis is accompanied with the progression of chronic kidney disease (CKD). Despite a number of past and ongoing studies, our understanding of the underlying mechanisms remains elusive. Here we explored the progression of renal fibrosis by using a mouse model, unilateral ureter obstruction (UUO). We found that in the initial stage of the progression where extracellular matrix did not deposit yet, the proximal tubular cells arrested at the G2 of the cell cycle. This G2 arrest was induced prior to activation of both DNA damage checkpoint and Wnt/β-Catenin pathway. Further analyses in vivo and in vitro indicated the cyclin dependent kinase inhibitor p21 is involved in the G2 arrest after the damage. The newly produced monoclonal antibody against p21 revealed that the p21 levels were sharply upregulated in response to the damage during the initial stage, but dropped down toward the later stage. To examine the function of p21 in the progression of renal fibrosis, we constructed the novel p21 deficient mice by i-GONAD. Compared with wild-type mice, p21 deficient mice showed the exacerbation of the fibrosis. Thus we propose that during the initial stage of the fibrosis following the renal damage, tubular cells arrest in the G2 phase depending on p21, thereby safeguarding the kidney functions.

Abstract Mutations in PKD1 or PKD2 genes lead to autosomal dominant polycystic kidney disease (ADPKD) that is the most frequent family inherited renal disorder. These genes encode polycystin-1/PC-1 and polycycstin-2/PC-2, respectively. Although the genetic basis of ADPKD is well established, the crucial functions of polycystins underlying onset and development of cyst formation remain elusive. Fission yeast Schizosaccharomyces pombe has a single polycystin homolog, Pkd2, which is essential for cell growth. In this study, the truncation analyses of Pkd2 reveal that Pkd2 localizes to not only the plasma membrane but also the endoplasmic reticulum (ER) and regulates cytoplasmic calcium signaling in fission yeast. Internal transmembrane domains within Pkd2 are sufficient for these processes. Surprisingly, more than half of Pkd2 is not required for cell viability. Cytoplasmic calcium levels are mainly regulated through C-terminus of Pkd2. Importantly, human Pkd2 also localizes to the ER and furthermore, fully complements the loss of fission yeast Pkd2. As the functions of polycystin-2 are conserved, fission yeast provides a suitable model to study the mechanism of ADPKD as well as polycystins.

Abstract Meiosis is a hallmark event in germ cell development that accompanies sequential chromosome events executed by numerous molecules. Therefore, characterization of these factors is one of the best strategies to clarify the mechanism of meiosis. Here, we report tripartite motif-containing 41 (TRIM41), a ubiquitin ligase E3, as an essential factor for proper meiotic progression and fertility in male mice. Trim41 KO spermatocytes exhibited synaptonemal complex protein 3 (SYCP3) overloading, especially on the X chromosome, showing extensive self-synapsis of X chromosome and non-homologous synapsis between the X chromosome and autosomes. Furthermore, the mutant mice lacking the RING domain of TRIM41, required for the ubiquitin ligase E3 activity, phenocopied Trim41 KO mice. We then examined the behavior of mutant TRIM41 (ΔRING-TRIM41) and found that ΔRING-TRIM41 accumulated on the chromosome axes with overloaded SYCP3. This result showed that TRIM41 exerts the function on the chromosome axes. In summary, our study revealed that Trim41 is essential for preventing SYCP3 overloading and chaotic synapsis of the X chromosome, suggesting a TRIM41-mediated mechanism for regulating unsyapsed axes during male meiotic progression. Summary statement Trim41 -disruption caused abnormal synapsis configuration of the X chromosome and complete infertility in male mice. Thus, TRIM41 prevents the sex chromosome from chaotic synapsis.

The correct localization of proteins is linked to their cellular function. The