Significance TNF receptor-associated protein (TRAP1) is found predominantly in mitochondria. A possible direct impact of TRAP1 on mitochondrial metabolism remains unexplored. We used TRAP1-null cells and transient TRAP1 silencing/overexpression to show that TRAP1 regulates a metabolic switch between oxidative phosphorylation and aerobic glycolysis in immortalized mouse fibroblasts and in human tumor cells. TRAP1 deficiency promotes increased mitochondrial respiration, fatty acid oxidation, tricarboxylic acid cycle intermediates, ATP and reactive oxygen species, while concomitantly suppressing glucose metabolism. TRAP1 deficiency also results in strikingly enhanced cell motility and invasiveness. TRAP1 interaction with and regulation of mitochondrial c-Src provide a mechanistic basis for these phenotypes.

// Mikako Ogawa 1, 7, * , Yusuke Tomita 2, * , Yuko Nakamura 3 , Min-Jung Lee 2 , Sunmin Lee 2 , Saori Tomita 2 , Tadanobu Nagaya 3 , Kazuhide Sato 3 , Toyohiko Yamauchi 4 , Hidenao Iwai 4 , Abhishek Kumar 5 , Timothy Haystead 6 , Hari Shroff 5 , Peter L. Choyke 3 , Jane B. Trepel 2 , Hisataka Kobayashi 3 1 Medical Photonics Research Center, Hamamatsu University School of Medicine, Hamamatsu 431-3192, Japan 2 Developmental Therapeutics Branch, Center for Cancer Research, National Cancer Institute, NIH, Bethesda, MD 20892, USA 3 Molecular Imaging Program, Center for Cancer Research, National Cancer Institute, NIH, Bethesda, MD 20892, USA 4 Central Research Laboratory, Hamamatsu Photonics K. K., Hamamatsu 434-8601, Japan 5 Section on High Resolution Optical Imaging, NIBIB/NIH, Bethesda, MD 20892, USA 6 Department of Pharmacology and Cancer Biology, Duke University, Durham, NC 27710, USA 7 Laboratory for Bioanalysis and Molecular Imaging, Graduate School of Pharmaceutical Sciences, Hokkaido University, Sapporo 060-0812, Japan * Co-first author Correspondence to: Hisataka Kobayashi, email: Kobayash@mail.nih.gov Keywords: near infrared photoimmunotherapy, immunogenic cell death Received: October 12, 2016     Accepted: December 13, 2016     Published: January 02, 2017 ABSTRACT Immunogenic cell death (ICD) is a form of cell death that activates an adaptive immune response against dead-cell-associated antigens. Cancer cells killed via ICD can elicit antitumor immunity. ICD is efficiently induced by near-infrared photo-immunotherapy (NIR-PIT) that selectively kills target-cells on which antibody-photoabsorber conjugates bind and are activated by NIR light exposure. Advanced live cell microscopies showed that NIR-PIT caused rapid and irreversible damage to the cell membrane function leading to swelling and bursting, releasing intracellular components due to the influx of water into the cell. The process also induces relocation of ICD bio markers including calreticulin, Hsp70 and Hsp90 to the cell surface and the rapid release of immunogenic signals including ATP and HMGB1 followed by maturation of immature dendritic cells. Thus, NIR-PIT is a therapy that kills tumor cells by ICD, eliciting a host immune response against tumor.

Extracellular vesicles (EVs) of various types are released or shed from all cells. EVs carry proteins and contain additional protein and nucleic acid cargo that relates to their biogenesis and cell of origin. EV cargo in liquid biopsies is of widespread interest owing to its ability to provide a retrospective snapshot of cell state at the time of EV release. For the purposes of EV cargo analysis and repertoire profiling, multiplex assays are an essential tool in multiparametric analyte studies but are still being developed for high-parameter EV protein detection. Although bead-based EV multiplex analyses offer EV profiling capabilities with conventional flow cytometers, the utilization of EV multiplex assays has been limited by the lack of software analysis tools for such assays. To facilitate robust EV repertoire studies, we developed multiplex analysis post-acquisition analysis (MPAPASS) open-source software for stitched multiplex analysis, EV database-compatible reporting, and visualization of EV repertoires.

Abstract Asymmetric division of stem cells allows for maintenance of the cell population and differentiation for harmonious progress. Developing mouse incisors allows for examination of how the stem cell niche employs specific insights into essential phases. Microtubule-associated serine/threonine kinase family member 4 ( Mast4 ) knockout (KO) mice showed abnormal incisor development with weak hardness as the apical bud was reduced and preameloblasts were shifted to the apical side, resulting in Amelogenesis Imperfecta. In addition, Mast4 KO incisors showed abnormal enamel maturation, and stem cell maintenance was inhibited as amelogenesis accelerated. Distal-Less Homeobox 3 (DLX3), known to be a critical factor Tricho-Dento-Osseous (TDO) syndrome, is considered to be responsible for Amelogenesis Imperfecta in humans. MAST4 directly binds to DLX3 and induces phosphorylation at three residues within the nuclear localization sites (NLS) that promote the nuclear translocation of DLX3. MAST4-mediated phosphorylation of DLX3 ultimately controls the transcription of DLX3 target genes, which are carbonic anhydrase and ion transporter genes involved in the pH regulation process during ameloblast maturation. Taken together, our data reveal a novel role of MAST4 as a critical regulator of ameloblast maturation, which controls DLX3 transcriptional activity.

Cabozantinib and nivolumab (CaboNivo) alone or with ipilimumab (CaboNivoIpi) have shown promising efficacy and safety in patients with metastatic urothelial carcinoma (mUC), metastatic renal cell carcinoma (mRCC), and rare genitourinary (GU) tumors in a dose-escalation phase I study. We report the final data analysis of the safety, overall response rate (ORR), progression-free survival (PFS), and overall survival (OS) of the phase I patients and seven expansion cohorts.

Extracellular vesicles (EVs) of various types are released or shed from all cells. EVs carry proteins and contain additional protein and nucleic acid cargo that relates to their biogenesis and cell of origin. EV cargo in liquid biopsies of widespread interest due to its ability to provide a retrospective snapshot of cell state at the time of EV release. For the purposes of EV cargo analysis and repertoire profiling, multiplex assays are an essential tool in multiparametric analyte studies but are still being developed for high-parameter EV protein detection. Although bead-based EV multiplex analyses offer EV profiling capabilities with conventional flow cytometers, the utilization of EV multiplex assays has been limited by the lack of software analysis tools for such assays. Therefore, to facilitate robust EV repertoire studies, we have developed a free, open-source software (MPAPASS) for stitched multiplex analysis, EV database-compatible reporting, and visualization of EV repertoires.