ABSTRACT Adoptive therapy with genetically engineered T cells offers potential for infectious disease treatment in immunocompromised persons. HIV/simian immunodeficiency virus (SIV) infected cells express phosphatidylserine (PS) early post-infection. We tested whether chimeric engulfment receptor (CER) T cells designed to recognize PS-expressing cells could eliminate SIV infected cells. Lentiviral CER constructs comprised of the extracellular domain of T-cell immunoglobulin and mucin domain containing 4 (TIM-4), the PS receptor, and engulfment signaling domains were transduced into primary rhesus macaque (RM) T cells. We measured PS binding and T-cell engulfment of RM CD4+ T cells infected with SIV expressing GFP. As chimeric antigen receptor (CAR) T cells induce PS and subsequent TIM-4 binding, we evaluated in vitro killing of CAR and CER T-cell combinations. We found that recombinant TIM-4 bound to SIV infected cells. In vitro, CER CD4+ T cells effectively killed SIV infected cells, which was dependent on TIM-4 binding to PS. Enhanced killing of SIV infected CD4+ T cells by CER and CAR T-cell combinations was observed. This installation of innate immune functions into T cells presents an opportunity to enhance elimination of SIV infected cells and offers potential to augment functional cure of SIV/HIV infection.

The mammalian cortex is comprised of cells with different morphological, physiological, and molecular properties that can be classified according to shared properties into cell types. Defining the contribution of each cell type to the computational and cognitive processes that are guided by the cortex is essential for understanding its function in health and disease. We use transcriptomic and epigenomic cortical cell type taxonomies from mice and humans to define marker genes and enhancers, and to build genetic tools for cortical cell types. Here, we present a large toolkit for selective targeting of cortical populations, including mouse transgenic lines and recombinant adeno-associated virus (AAV) vectors containing genomic enhancers. We report evaluation of fifteen new transgenic driver lines and over 680 different enhancer AAVs covering all major subclasses of cortical cells, with many achieving a high degree of specificity, comparable with existing transgenic lines. We find that the transgenic lines based on marker genes can provide exceptional specificity and completeness of cell type labeling, but frequently require generation of a triple-transgenic cross for best usability/specificity. On the other hand, enhancer AAVs are easy to screen and use, and can be easily modified to express diverse cargo, such as recombinases. However, their use depends on many factors, such as viral titer and route of administration. The tools reported here as well as the scaled process of tool creation provide an unprecedented resource that should enable diverse experimental strategies towards understanding mammalian cortex and brain function.