ABSTRACT Intestinal flora contains a reservoir of Gram-negative bacilli (GNB) resistant to cephalosporins, which are potentially pathogenic for intensive care unit (ICU) patients; this has led to increasing use of carbapenems. The emergence of carbapenem resistance is a major concern for ICUs. Therefore, in this study, we aimed to assess the intestinal carriage of imipenem-resistant GNB (IR-GNB) in intensive care patients. For 6 months, 523 consecutive ICU patients were screened for rectal IR-GNB colonization upon admission and weekly thereafter. The phenotypes and genotypes of all isolates were determined, and a case control study was performed to identify risk factors for colonization. The IR-GNB colonization rate increased regularly from 5.6% after 1 week to 58.6% after 6 weeks in the ICU. In all, 56 IR-GNB strains were collected from 50 patients: 36 Pseudomonas aeruginosa strains, 12 Stenotrophomonas maltophilia strains, 6 Enterobacteriaceae strains, and 2 Acinetobacter baumannii strains. In P. aeruginosa , imipenem resistance was due to chromosomally encoded resistance (32 strains) or carbapenemase production (4 strains). In the Enterobacteriaceae strains, resistance was due to AmpC cephalosporinase and/or extended-spectrum β-lactamase production with porin loss. Genomic comparison showed that the strains were highly diverse, with 8 exceptions (4 VIM-2 carbapenemase-producing P. aeruginosa strains, 2 Klebsiella pneumoniae strains, and 2 S. maltophilia strains). The main risk factor for IR-GNB colonization was prior imipenem exposure. The odds ratio for colonization was already as high as 5.9 (95% confidence interval [95% CI], 1.5 to 25.7) after 1 to 3 days of exposure and increased to 7.8 (95% CI, 2.4 to 29.8) thereafter. In conclusion, even brief exposure to imipenem is a major risk factor for IR-GNB carriage.

Background. Multidrug-resistant Enterobacteriaceae (MRE) are widespread in the community, especially in tropical regions. Travelers are at risk of acquiring MRE in these regions, but the precise extent of the problem is not known.

The risk of acquisition of multidrug-resistant Enterobacteriaceae (MRE) and of occurrence of diarrhoea is high when travelling to tropical regions. The relationships between these phenomena and the composition of human gut microbiota have not yet been assessed. Here, we investigated the dynamics of changes of metabolically active microbiota by sequencing total RNA from faecal samples taken before and after travel to tropical regions. We found that the occurrence of diarrhoea during the travel was associated with a higher relative abundance of Prevotella copri before departure and after return. The composition of microbiota, before travel as well as at return, was not correlated with the acquisition of MRE. However, the clearance of MRE one month after return was linked to a specific pattern of bacterial species that was also found before and after return.