Background

 Bacterial cells in the human body account for 1–3% of total body weight and are at least equal in number to human cells. Recent research has focused on understanding how the different bacterial communities in the body (eg, gut, respiratory, skin, and vaginal microbiomes) predispose to health and disease. The microbiota of the reproductive tract has been inferred from the vaginal bacterial communities, and the uterus has been classically considered a sterile cavity. However, while the vaginal microbiota has been investigated in depth, there is a paucity of consistent data regarding the existence of an endometrial microbiota and its possible impact in reproductive function. 

Objective

 This study sought to test the existence of an endometrial microbiota that differs from that in the vagina, assess its hormonal regulation, and analyze the impact of the endometrial microbial community on reproductive outcome in infertile patients undergoing in vitro fertilization. 

Study Design

 To identify the existence of an endometrial microbiota, paired samples of endometrial fluid and vaginal aspirates were obtained simultaneously from 13 fertile women in prereceptive and receptive phases within the same menstrual cycle (total samples analyzed n = 52). To investigate the hormonal regulation of the endometrial microbiota during the acquisition of endometrial receptivity, endometrial fluid was collected at prereceptive and receptive phases within the same cycle from 22 fertile women (n = 44). Finally, the reproductive impact of an altered endometrial microbiota in endometrial fluid was assessed by implantation, ongoing pregnancy, and live birth rates in 35 infertile patients undergoing in vitro fertilization (total samples n = 41) with a receptive endometrium diagnosed using the endometrial receptivity array. Genomic DNA was obtained either from endometrial fluid or vaginal aspirate and sequenced by 454 pyrosequencing of the V3–V5 region of the 16S ribosomal RNA (rRNA) gene; the resulting sequences were taxonomically assigned using QIIME. Data analysis was performed using R packages. The χ² test, Student t test, and analysis of variance were used for statistical analyses. 

Results

 When bacterial communities from paired endometrial fluid and vaginal aspirate samples within the same subjects were interrogated, different bacterial communities were detected between the uterine cavity and the vagina of some subjects. Based on its composition, the microbiota in the endometrial fluid, comprising up to 191 operational taxonomic units, was defined as a Lactobacillus-dominated microbiota (>90% Lactobacillus spp.) or a non-Lactobacillus-dominated microbiota (<90% Lactobacillus spp. with >10% of other bacteria). Although the endometrial microbiota was not hormonally regulated during the acquisition of endometrial receptivity, the presence of a non-Lactobacillus-dominated microbiota in a receptive endometrium was associated with significant decreases in implantation [60.7% vs 23.1% (P = .02)], pregnancy [70.6% vs 33.3% (P = .03)], ongoing pregnancy [58.8% vs 13.3% (P = .02)], and live birth [58.8% vs 6.7% (P = .002)] rates. 

Conclusion

 Our results demonstrate the existence of an endometrial microbiota that is highly stable during the acquisition of endometrial receptivity. However, pathological modification of its profile is associated with poor reproductive outcomes for in vitro fertilization patients. This finding adds a novel microbiological dimension to the reproductive process.

Genome sequences of nine species of citrus, including oranges, pummelos and mandarins, reveal pathways of domestication and provide resources for breeding. Cultivated citrus are selections from, or hybrids of, wild progenitor species whose identities and contributions to citrus domestication remain controversial. Here we sequence and compare citrus genomes—a high-quality reference haploid clementine genome and mandarin, pummelo, sweet-orange and sour-orange genomes—and show that cultivated types derive from two progenitor species. Although cultivated pummelos represent selections from one progenitor species, Citrus maxima, cultivated mandarins are introgressions of C. maxima into the ancestral mandarin species Citrus reticulata. The most widely cultivated citrus, sweet orange, is the offspring of previously admixed individuals, but sour orange is an F1 hybrid of pure C. maxima and C. reticulata parents, thus implying that wild mandarins were part of the early breeding germplasm. A Chinese wild 'mandarin' diverges substantially from C. reticulata, thus suggesting the possibility of other unrecognized wild citrus species. Understanding citrus phylogeny through genome analysis clarifies taxonomic relationships and facilitates sequence-directed genetic improvement.

A simple and rapid method of yeast strain characterization based on mitochondrial DNA restriction analysis was applied to the control of wine fermentations conducted by active dry yeast strains. This molecular approach allows us to understand several important aspects of this process, such as the role of the active dry yeast strain and that of the natural Saccharomyces cerevisiae flora during vinification. In this paper, we demonstrate that the inoculated strain is really responsible for the fermentation but does not suppress significant development of natural strains during the first stages. During this early period, natural strains could have important effects on wine flavor.

An extensive survey of different methods of yeast strain identification (classical microbiological tests, whole-cell protein electrophoresis, chromosomal patterns, DNA hybridization and mitochondrial DNA restriction analysis) has been carried out in order to differentiate, with industrial purposes, strains present in the Alicante wine ecosystem. Only chromosomal patterns and mitochondrial DNA (mtDNA) restriction analysis show differences between strains. Both techniques are very complex to be used in bio technological industries. For this reason, we have developed a new, simple, unexpensive and rapid method based on mtDNA restriction analysis.

Background: Some studies have been conducted to assess the composition of the bacterial communities inhabiting human milk, but they did not evaluate the presence of other microorganisms, such as fungi, archaea, protozoa, or viruses. Objective: This study aimed to compare the metagenome of human milk samples provided by healthy and mastitis-suffering women. Methods: DNA was isolated from human milk samples collected from 10 healthy women and 10 women with symptoms of lactational mastitis. Shotgun libraries from total extracted DNA were constructed and the libraries were sequenced by 454 pyrosequencing. Results: The amount of human DNA sequences was ≥ 90% in all the samples. Among the bacterial sequences, the predominant phyla were Proteobacteria, Firmicutes, and Bacteroidetes. The healthy core microbiome included the genera Staphylococcus, Streptococcus, Bacteroides, Faecalibacterium, Ruminococcus, Lactobacillus, and Propionibacterium. At the species level, a high degree of inter-individual variability was observed among healthy women. In contrast, Staphylococcus aureus clearly dominated the microbiome in the samples from the women with acute mastitis whereas high increases in Staphylococcus epidermidis-related reads were observed in the milk of those suffering from subacute mastitis. Fungal and protozoa-related reads were identified in most of the samples, whereas Archaea reads were absent in samples from women with mastitis. Some viral-related sequence reads were also detected. Conclusion: Human milk contains a complex microbial metagenome constituted by the genomes of bacteria, archaea, viruses, fungi, and protozoa. In mastitis cases, the milk microbiome reflects a loss of bacterial diversity and a high increase of the sequences related to the presumptive etiological agents.

Abstract Microbial communities that are exposed to sunlight typically share a series of adaptations to deal with the radiation they are exposed to, including efficient DNA repair systems, pigment production and protection against oxidative stress, which makes these environments good candidates for the search of novel antioxidant microorganisms. In this research project, we isolated potential antioxidant pigmented bacteria from a dry and highly-irradiated extreme environment: solar panels. High-throughput in vivo assays using Caenorhabiditis elegans as an experimental model demonstrated the high antioxidant and ultraviolet-protection properties of these bacterial isolates that proved to be rich in carotenoids. Our results suggest that solar panels harbor a microbial community that includes strains with potential applications as antioxidants.

With increasing evidence showing the connections between the microbiome, neurophysiology, and behavior, our research endeavors to investigate whether the consumption of a combination of two postbiotics with antioxidant effects can affect behavior regulation in model species. Here, we worked with a combination (1:1 ratio) of heat-treated

Microorganisms colonize a wide range of natural and artificial environments although there are hardly any data on the microbial ecology of one the most widespread man-made extreme structures: solar panels. Here we show that solar panels in a Mediterranean city (Valencia, Spain) harbor a highly diverse microbial community with more than 500 different species per panel, most of which belong to drought-, heat- and radiation-adapted bacterial genera, and sun-irradiation adapted epiphytic fungi. The taxonomic and functional profiles of this microbial community and the characterization of selected culturable bacteria reveal the existence of a diverse mesophilic microbial community on the panels surface. This biocenosis proved to be more similar to the ones inhabiting deserts than to any human or urban microbial ecosystem. This unique microbial community shows different day/night proteomic profiles; it is dominated by reddish pigment- and sphingolipid-producers, and is adapted to withstand circadian cycles of high temperatures, desiccation and solar radiation.