Recent studies indicate that the precise timing and location of excitation and inhibition (E/I) within active dendritic trees can significantly impact neuronal function. How excitatory and inhibitory inputs are functionally organized at the subcellular level in intact circuits remains unclear. To address this issue, we took advantage of the retinal direction-selective ganglion cell circuit, in which directionally tuned inhibitory GABAergic input arising from starburst amacrine cells shape direction-selective dendritic responses. We combined two-photon Ca2+ imaging with genetic, pharmacological, and single-cell ablation methods to examine local E/I. We demonstrate that when active dendritic conductances are blocked, direction selectivity emerges semi-independently within unusually small dendritic segments (<10 µm). Impressively, the direction encoded by each segment is relatively homogenous throughout the ganglion cell’s dendritic tree. Together the results demonstrate a precise subcellular functional organization of excitatory and inhibitory input, which suggests that the parallel processing scheme proposed for direction encoding could be more fine-grained than previously envisioned.

In the mammalian retina, asymmetric inhibitory signals arising from the direction-selective dendrites of GABAergic/cholinergic starburst amacrine cells are thought to be crucial for originating direction selectivity. Contrary to this notion, however, we found that direction selectivity in downstream ganglion cells remains remarkably unaffected when starburst output is rendered non-directional (using a novel strategy combining a conditional GABA receptor knockout mouse with optogenetics). We show that temporal asymmetries between excitation/inhibition, arising from the differential connectivity patterns of starburst cholinergic and GABAergic synapses to ganglion cells, form the basis for a parallel mechanism generating direction selectivity. We further demonstrate that these distinct mechanisms work in a coordinated way to refine direction selectivity as the stimulus crosses the ganglion cells receptive field. Thus, precise spatiotemporal patterns of inhibition and excitation that shape directional responses in ganglion cells are shaped by two core mechanisms, both arising from distinct specializations of the starburst network.

A bstract The asymmetric summation of kinetically distinct glutamate inputs across the dendrites of retinal “starburst” amacrine cells is proposed to underlie their direction selective properties, but experimentally verifying input kinetics has been a challenge. Here, we used two-photon glutamate sensor (iGluSnFR) imaging to directly measure the input kinetics across individual starburst dendrites. We found that signals measured from proximal dendrites were relatively sustained compared to those measured from distal dendrites. These differences were observed across a range of stimulus sizes and appeared to be shaped mainly by excitatory rather than inhibitory network interactions. Temporal deconvolution analysis suggests that the steady-state vesicle release rate was ∼ 3 times larger at proximal sites compared to distal sites. Using a connectomics-inspired computational model, we demonstrate that input kinetics play an important role in shaping direction selectivity at low stimulus velocities. Together, these results provide direct support for the ‘space-time wiring’ model for direction selectivity.