KT
Kristina Tabbada
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The pluripotent regulatory circuitry connecting promoters to their long-range interacting elements

Stefan Schoenfelder et al.Mar 9, 2015
The mammalian genome harbors up to one million regulatory elements often located at great distances from their target genes. Long-range elements control genes through physical contact with promoters and can be recognized by the presence of specific histone modifications and transcription factor binding. Linking regulatory elements to specific promoters genome-wide is currently impeded by the limited resolution of high-throughput chromatin interaction assays. Here we apply a sequence capture approach to enrich Hi-C libraries for >22,000 annotated mouse promoters to identify statistically significant, long-range interactions at restriction fragment resolution, assigning long-range interacting elements to their target genes genome-wide in embryonic stem cells and fetal liver cells. The distal sites contacting active genes are enriched in active histone modifications and transcription factor occupancy, whereas inactive genes contact distal sites with repressive histone marks, demonstrating the regulatory potential of the distal elements identified. Furthermore, we find that coregulated genes cluster nonrandomly in spatial interaction networks correlated with their biological function and expression level. Interestingly, we find the strongest gene clustering in ES cells between transcription factor genes that control key developmental processes in embryogenesis. The results provide the first genome-wide catalog linking gene promoters to their long-range interacting elements and highlight the complex spatial regulatory circuitry controlling mammalian gene expression.
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Polycomb repressive complex PRC1 spatially constrains the mouse embryonic stem cell genome

Stefan Schoenfelder et al.Aug 31, 2015
Sarah Elderkin and colleagues show that PRC1 acts as a master regulator of genome architecture in mouse embryonic stem cells by organizing genes in three-dimensional interaction networks. They find that the strongest spatial network is composed of the four Hox clusters and key early developmental transcription factor genes, and they propose that selective release of genes from this spatial network underlies cell fate specification during embryonic development. The Polycomb repressive complexes PRC1 and PRC2 maintain embryonic stem cell (ESC) pluripotency by silencing lineage-specifying developmental regulator genes1. Emerging evidence suggests that Polycomb complexes act through controlling spatial genome organization2,3,4,5,6,7,8,9. We show that PRC1 functions as a master regulator of mouse ESC genome architecture by organizing genes in three-dimensional interaction networks. The strongest spatial network is composed of the four Hox gene clusters and early developmental transcription factor genes, the majority of which contact poised enhancers. Removal of Polycomb repression leads to disruption of promoter-promoter contacts in the Hox gene network. In contrast, promoter-enhancer contacts are maintained in the absence of Polycomb repression, with accompanying widespread acquisition of active chromatin signatures at network enhancers and pronounced transcriptional upregulation of network genes. Thus, PRC1 physically constrains developmental transcription factor genes and their enhancers in a silenced but poised spatial network. We propose that the selective release of genes from this spatial network underlies cell fate specification during early embryonic development.
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IL-7R signalling activates widespread VH and DH gene usage to drive antibody diversity in bone marrow B cells

Amanda Baizan-Edge et al.Sep 25, 2020
Abstract Generation of the primary antibody repertoire requires V(D)J recombination of hundreds of gene segments in the immunoglobulin heavy chain (Igh) locus. It has been proposed that interleukin-7 receptor (IL-7R) signalling is necessary for Igh recombination, but this has been challenging to partition from the receptor’s role in B cell survival and proliferation. By generating the first detailed description of the Igh repertoire of murine IL-7Rα -/- bone marrow B cells, we demonstrate that IL-7R signalling profoundly influences V H gene selection during V H -to-DJ H recombination. We find skewing towards usage of 3’ V H genes during de novo V H -to-DJ H recombination that is more severe than the fetal liver (FL) B cell repertoire, and we now show a role for IL-7R signalling in D H -to-J H recombination. Transcriptome and accessibility analyses suggests reduced expression of B lineage-specific transcription factors (TFs) and their targets, and loss of D H and V H antisense transcription in IL-7Rα -/- B cells. These results refute models suggesting that IL-7R signalling is only required for survival and proliferation, and demonstrate a pivotal role in shaping the Igh repertoire by activating underpinning epigenetic mechanisms.