Abstract Visceral adiposity is a risk factor for severe COVID-19, and a link between adipose tissue infection and disease progression has been proposed. Here we demonstrate that SARS-CoV-2 infects human adipose tissue and undergoes productive infection in fat cells. However, susceptibility to infection and the cellular response depends on the anatomical origin of the cells and the viral lineage. Visceral fat cells express more ACE2 and are more susceptible to SARS-CoV-2 infection than their subcutaneous counterparts. SARS-CoV-2 infection leads to inhibition of lipolysis in subcutaneous fat cells, while in visceral fat cells, it results in higher expression of pro-inflammatory cytokines. Viral load and cellular response are attenuated when visceral fat cells are infected with the SARS-CoV-2 gamma variant. A similar degree of cell death occurs 4-days after SARS-CoV-2 infection, regardless of the cell origin or viral lineage. Hence, SARS-CoV-2 infects human fat cells, replicating and altering cell function and viability in a depot- and viral lineage-dependent fashion.

Abstract The COVID-19 disease caued by the Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 (SARS-CoV-2) has two characteristics that distinguish it from other viral infections. It affects more severely people with pre-existing comorbidities and viral load peaks prior to the onset of the symptoms. Investigating factors that could contribute to these characteristics, we found increased mTOR signaling and suppressed genes related to autophagy, lysosome, and vesicle fusion in Vero E6 cells infected with SARS-CoV-2. Transcriptomic data mining of bronchoalveolar epithelial cells from severe COVID-19 patients revealed that COVID-19 severity is associated with increased expression of genes related to mTOR signaling and decreased expression of genes related to autophagy, lysosome function, and vesicle fusion. SARS-CoV-2 infection in Vero E6 cells also resulted in virus retention inside the cells and trafficking of virus-bearing vesicles between neighboring cells. Our findings support a scenario where SARS-CoV-2 benefits from compromised autophagic flux and inhibited exocytosis in individuals with chronic hyperactivation of mTOR signaling, which might relate to undetectable proliferation and evasion of the immune system.

Female reproductive function is negatively impacted by age. Animal and human studies show that fibrosis of the uterus contributes to gestational outcomes. Collagen deposition in the myometrial and endometrial layers is the main change related to uterine aging. Senolytic therapies are a potential option for reducing diseases and health complications related to aging. We investigated effects of aging and the senolytic drug combination of dasatinib plus quercetin (D+Q) on uterine fibrosis. A total of 40 mice, 20 young females (03-months) and 20 old females (18-months), were analyzed. Young (Y) and old (O) animals were divided into groups of 10 mice, with one treatment (T) group (YT and OT) and another control (C) group (YC and OC). Comparative analysis of Pi3k/Akt1/mTor and p53 gene expression among the 4 groups was performed to test effects of age and treatment on collagen deposition in uterine tissue. Uterine levels of microRNAs (miR34a, miR34b, miR34c, miR146a, miR449a, miR21a, miR126a, and miR181b) were evaluated. Aging promoted downregulation of genes of the Pi3k/Akt1/mTor signaling pathway (p=0.005, p=0.031, and p=0.028, respectively) as well as a reduction in expression of miR34c (p=0.029), miR126a (p=0.009), and miR181b (p=0.007). D+Q treatment increased p53 gene expression (p=0.041) and decreased levels of miR34a (p=0.016). Our results demonstrate a role for the Pi3k/Akt1/mTor signaling pathway in uterine aging and suggest for the first time a possible anti-fibrotic effect in the uterus of D+Q senolytic therapy.

Objective: The aim of the study was to evaluate the role of growth hormone (GH) in DNA damage, macrophage infiltration and the granulosa cells number of primordial and primary follicles. Methods: For these experiments six groups of female mice were used. Four groups consisted of Ames dwarf (Prop-1df, df/df, n=12) and their normal littermates (N/df, n=12) mice, between sixteen and eighteen month-old, receiving GH (n=6 for df/df, and n=6 for N/df mice) or saline injections (n=6 for df/df, and n=6 for N/df mice). The other two groups consisted of ten to twelve-month-old bGH (n=6) and normal mice (N, n=6). Immunofluorescence for DNA damage (anti- γH2AX) and macrophage counting (anti-CD68) were performed. Granulosa cells of primordial and primary follicles were counted. Results: Female df/df mice had lower γH2AX foci intensity in in both oocytes and granulosa cells of primordial and primary follicles (p<0.05), indicating less DNA double strand breaks (DSBs). In addition, GH treatment increased DSBs in both df/df and N/df mice. Inversely, bGH mice had higher quantity of DSBs in both oocytes and granulosa cells of primordial and primary follicles (p<0.05). Df/df mice showed ovarian tissue with less macrophage infiltration than N/df mice (p<0.05) and GH treatment increased macrophage infiltration (p<0.05). On the other hand, bGH mice had ovarian tissue with more macrophage infiltration compared to normal mice (p<0.05). Df/df mice had less granulosa cells on primordial and primary follicles than N/df mice (p<0.05). GH treatment did not affect the granulosa cells number (p>0.05). However, bGH mice had an increased number of granulosa cells on primordial and primary follicles compared to normal mice (p<0.05). Conclusion: The current study points to the role of the GH/IGF-I axis in maintenance of oocyte DNA integrity and macrophage ovarian infiltration in mice.