The ability to generate lung and airway epithelial cells from human pluripotent stem cells (hPSCs) would have applications in regenerative medicine, modeling of lung disease, drug screening and studies of human lung development. We have established, based on developmental paradigms, a highly efficient method for directed differentiation of hPSCs into lung and airway epithelial cells. Long-term differentiation of hPSCs in vivo and in vitro yielded basal, goblet, Clara, ciliated, type I and type II alveolar epithelial cells. The type II alveolar epithelial cells were capable of surfactant protein-B uptake and stimulated surfactant release, providing evidence of specific function. Inhibiting or removing retinoic acid, Wnt and BMP-agonists to signaling pathways critical for early lung development in the mouse-recapitulated defects in corresponding genetic mouse knockouts. As this protocol generates most cell types of the respiratory system, it may be useful for deriving patient-specific therapeutic cells.

Lung injury and fibrosis represent the most significant outcomes of severe and acute lung disorders, including COVID-19. However, there are still no effective drugs to treat lung injury and fibrosis. In this study, we report the generation of clinical-grade human embryonic stem cells (hESCs)-derived immunity- and matrix-regulatory cells (IMRCs) manufactured under good manufacturing practice (GMP) requirements, that can treat lung injury and fibrosis in vivo. We generate IMRCs through sequentially differentiating hESCs with xeno-free reagents. IMRCs possess a unique gene expression profile distinct from umbilical cord mesenchymal stem cells (UCMSCs), such as higher levels of proliferative, immunomodulatory and anti-fibrotic genes. Moreover, intravenous delivery of IMRCs inhibits both pulmonary inflammation and fibrosis in mouse models of lung injury, and significantly improves the survival rate of the recipient mice in a dose-dependent manner, likely through their paracrine functions. IMRCs are superior to both primary UCMSCs and FDA-approved pirfenidone, with an excellent efficacy and safety profile in mice, monkeys and two severely ill COVID-19 patients in our pilot study. In light of recent public health crises involving pneumonia, acute lung injury (ALI) and acute respiratory distress syndrome (ARDS), our findings indicate that IMRCs are ready for clinical trials on lung disorders.### Competing Interest StatementThe authors have declared no competing interest.

Abstract Immunogenicity testing and characterization is an important part of understanding the immune response to administration of a protein therapeutic. Neutralizing antibody (NAb) assays are used to characterize a positive anti-drug antibody (ADA) response. Harmonization of reporting of NAb assay performance and results enables efficient communication and expedient review by industry and health authorities. Herein, a cross-industry group of NAb assay experts have harmonized NAb assay reporting recommendations and provided a bioanalytical report (BAR) submission editable template developed to facilitate agency filings. This document addresses key bioanalytical reporting gaps and provides a report structure for documenting clinical NAb assay performance and results. This publication focuses on the content and presentation of the NAb sample analysis report including essential elements such as the method, critical reagents and equipment, data analysis, study samples, and results. The interpretation of immunogenicity data, including the evaluation of the impact of NAb on safety, exposure, and efficacy, is out of scope of this publication. Graphical Abstract

ABSTRACT There is an urgent need for animal models of COVID-19 to study immunopathogenesis and test therapeutic intervenes. In this study we showed that NSG mice engrafted with human lung (HL) tissue (NSG-L mice) could be infected efficiently by SARS-CoV-2, and that live virus capable of infecting Vero cells was found in the HL grafts and multiple organs from infected NSG-L mice. RNA-seq examination identified a series of differentially expressed genes, which are enriched in viral defense responses, chemotaxis, interferon stimulation, and pulmonary fibrosis between HL grafts from infected and control NSG-L mice. Furthermore, when infecting humanized mice with human immune system (HIS) and autologous HL grafts (HISL mice), the mice had bodyweight loss and hemorrhage and immune cell infiltration in HL grafts, which were not observed in immunodeficient NSG-L mice, indicating the development of anti-viral immune responses in these mice. In support of this possibility, the infected HISL mice showed bodyweight recovery and lack of detectable live virus at the later time. These results demonstrate that NSG-L and HISL mice are susceptible to SARS-CoV-2 infection, offering a useful in vivo model for studying SARS-CoV-2 infection and the associated immune response and immunopathology, and testing anti-SARS-CoV-2 therapies.