HK
Holger Kruse
Author with expertise in Protein Structure Prediction and Analysis
Achievements
Cited Author
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
11
(27% Open Access)
Cited by:
3,516
h-index:
28
/
i10-index:
70
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

Exploring Nature and Predicting Strength of Hydrogen Bonds: A Correlation Analysis Between Atoms‐in‐Molecules Descriptors, Binding Energies, and Energy Components of Symmetry‐Adapted Perturbation Theory

Saeedreza Emamian et al.Sep 13, 2019
This work studies the underlying nature of H-bonds (HBs) of different types and strengths and tries to predict binding energies (BEs) based on the properties derived from wave function analysis. A total of 42 HB complexes constructed from 28 neutral and 14 charged monomers were considered. This set was designed to sample a wide range of HB strengths to obtain a complete view about HBs. BEs were derived with the accurate coupled cluster singles and doubles with perturbative triples correction (CCSD(T))(T) method and the physical components of the BE were investigated by symmetry-adapted perturbation theory (SAPT). Quantum theory of atoms-in-molecules (QTAIM) descriptors and other HB indices were calculated based on high-quality density functional theory wave functions. We propose a new and rigorous classification of H-bonds (HBs) based on the SAPT decomposition. Neutral complexes are either classified as "very weak" HBs with a BE ≥ -2.5 kcal/mol that are mainly dominated by both dispersion and electrostatic interactions or as "weak-to-medium" HBs with a BE varying between -2.5 and -14.0 kcal/mol that are only dominated by electrostatic interactions. On the other hand, charged complexes are divided into "medium" HBs with a BE in the range of -11.0 to -15.0 kcal/mol, which are mainly dominated by electrostatic interactions, or into "strong" HBs whose BE is more negative than -15.0 kcal/mol, which are mainly dominated by electrostatic together with induction interactions. Among various explored correlations between BEs and wave function-based HB descriptors, a fairly satisfactory correlation was found for the electron density at the bond critical point (BCP; ρBCP ) of HBs. The fitted equation for neutral complexes is BE/kcal/mol = - 223.08 × ρBCP /a. u. + 0.7423 with a mean absolute percentage error (MAPE) of 14.7%, while that for charged complexes is BE/kcal/mol = - 332.34 × ρBCP /a. u. - 1.0661 with a MAPE of 10.0%. In practice, these equations may be used for a quick estimation of HB BEs, for example, for intramolecular HBs or large HB networks in biomolecules. © 2019 Wiley Periodicals, Inc.
0

A geometrical correction for the inter- and intra-molecular basis set superposition error in Hartree-Fock and density functional theory calculations for large systems

Holger Kruse et al.Apr 16, 2012
A semi-empirical counterpoise-type correction for basis set superposition error (BSSE) in molecular systems is presented. An atom pair-wise potential corrects for the inter- and intra-molecular BSSE in supermolecular Hartree-Fock (HF) or density functional theory (DFT) calculations. This geometrical counterpoise (gCP) denoted scheme depends only on the molecular geometry, i.e., no input from the electronic wave-function is required and hence is applicable to molecules with ten thousands of atoms. The four necessary parameters have been determined by a fit to standard Boys and Bernadi counterpoise corrections for Hobza's S66×8 set of non-covalently bound complexes (528 data points). The method's target are small basis sets (e.g., minimal, split-valence, 6-31G*), but reliable results are also obtained for larger triple-ζ sets. The intermolecular BSSE is calculated by gCP within a typical error of 10%–30% that proves sufficient in many practical applications. The approach is suggested as a quantitative correction in production work and can also be routinely applied to estimate the magnitude of the BSSE beforehand. The applicability for biomolecules as the primary target is tested for the crambin protein, where gCP removes intramolecular BSSE effectively and yields conformational energies comparable to def2-TZVP basis results. Good mutual agreement is also found with Jensen's ACP(4) scheme, estimating the intramolecular BSSE in the phenylalanine-glycine-phenylalanine tripeptide, for which also a relaxed rotational energy profile is presented. A variety of minimal and double-ζ basis sets combined with gCP and the dispersion corrections DFT-D3 and DFT-NL are successfully benchmarked on the S22 and S66 sets of non-covalent interactions. Outstanding performance with a mean absolute deviation (MAD) of 0.51 kcal/mol (0.38 kcal/mol after D3-refit) is obtained at the gCP-corrected HF-D3/(minimal basis) level for the S66 benchmark. The gCP-corrected B3LYP-D3/6-31G* model chemistry yields MAD=0.68 kcal/mol, which represents a huge improvement over plain B3LYP/6-31G* (MAD=2.3 kcal/mol). Application of gCP-corrected B97-D3 and HF-D3 on a set of large protein-ligand complexes prove the robustness of the method. Analytical gCP gradients make optimizations of large systems feasible with small basis sets, as demonstrated for the inter-ring distances of 9-helicene and most of the complexes in Hobza's S22 test set. The method is implemented in a freely available FORTRAN program obtainable from the author's website.
0

Benchmarking Density Functional Methods against the S66 and S66x8 Datasets for Non‐Covalent Interactions

Lars Goerigk et al.Nov 23, 2011
Abstract Dispersion‐corrected density functional theory is assessed on the new S66 and S66x8 benchmark sets for non‐covalent interactions. In total, 17 different density functionals are evaluated. Two flavors of our latest additive London‐dispersion correction DFT‐D3 and DFT‐D3(BJ), which differ in their short‐range damping functions, are tested. In general, dispersion corrections are again shown to be crucial to obtain reliable non‐covalent interaction energies and equilibrium distances. The corrections strongly diminish the performance differences between the functionals, and in summary most dispersion‐corrected methods can be recommended. DFT‐D3 and DFT‐D3(BJ) also yield similar results but for most functionals and intermolecular distances, the rational Becke–Johnson scheme performs slightly better. Particularly, the statistical analysis for S66x8, which covers also non‐equilibrium complex geometries, shows that the Minnesota class of functionals is also improved by the D3 scheme. The best methods on the ( meta ‐)GGA or hybrid‐ ( meta ‐)GGA level are B97‐D3, BLYP‐D3(BJ), PW6B95‐D3, MPW1B95‐D3 and LC‐ωPBE‐D3. Double‐hybrid functionals are the most accurate and robust methods, and in particular PWPB95‐D3 and B2‐PLYP‐D3(BJ) can be recommended. The best DFT‐D3 and DFT‐D3(BJ) approaches are competitive to specially adapted perturbation methods and clearly outperform standard MP2. Comparisons between S66, S22 and parts of the GMTKN30 database show that the S66 set provides statistically well‐behaved data and can serve as a valuable tool for, for example, fitting purposes or cross‐validation of other benchmark databases.
0

Identification of Thiazolidinones Spiro-Fused to Indolin-2-ones as Potent and Selective Inhibitors of theMycobacterium tuberculosisProtein Tyrosine Phosphatase B

Viktor Vintonyak et al.Jul 14, 2010
Angewandte Chemie International EditionVolume 49, Issue 34 p. 5902-5905 Communication Identification of Thiazolidinones Spiro-Fused to Indolin-2-ones as Potent and Selective Inhibitors of the Mycobacterium tuberculosis Protein Tyrosine Phosphatase B† Viktor V. Vintonyak Dr., Viktor V. Vintonyak Dr. Abteilung Chemische Biologie, Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie, Otto-Hahn-Strasse 11, 44227 Dortmund (Germany), Fax: (+49) 231-133-2499Search for more papers by this authorKarin Warburg Dr., Karin Warburg Dr. Abteilung Chemische Biologie, Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie, Otto-Hahn-Strasse 11, 44227 Dortmund (Germany), Fax: (+49) 231-133-2499 Fachbereich Chemische Biologie, Fakultät Chemie, Technische Universität Dortmund, Otto-Hahn-Strasse 6, 44227 Dortmund (Germany)Search for more papers by this authorHolger Kruse Dipl.-Chem., Holger Kruse Dipl.-Chem. Organisch-Chemisches Institut, Westfälische Wilhelms-Universität Münster (Germany)Search for more papers by this authorStefan Grimme Prof. Dr., Stefan Grimme Prof. Dr. Organisch-Chemisches Institut, Westfälische Wilhelms-Universität Münster (Germany)Search for more papers by this authorKatja Hübel Dr., Katja Hübel Dr. Abteilung Chemische Biologie, Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie, Otto-Hahn-Strasse 11, 44227 Dortmund (Germany), Fax: (+49) 231-133-2499Search for more papers by this authorDaniel Rauh Dr., Daniel Rauh Dr. Chemical Genomics Centre der Max-Planck-Gesellschaft, Dortmund (Germany)Search for more papers by this authorHerbert Waldmann Prof. Dr., Herbert Waldmann Prof. Dr. [email protected] Abteilung Chemische Biologie, Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie, Otto-Hahn-Strasse 11, 44227 Dortmund (Germany), Fax: (+49) 231-133-2499 Fachbereich Chemische Biologie, Fakultät Chemie, Technische Universität Dortmund, Otto-Hahn-Strasse 6, 44227 Dortmund (Germany)Search for more papers by this author Viktor V. Vintonyak Dr., Viktor V. Vintonyak Dr. Abteilung Chemische Biologie, Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie, Otto-Hahn-Strasse 11, 44227 Dortmund (Germany), Fax: (+49) 231-133-2499Search for more papers by this authorKarin Warburg Dr., Karin Warburg Dr. Abteilung Chemische Biologie, Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie, Otto-Hahn-Strasse 11, 44227 Dortmund (Germany), Fax: (+49) 231-133-2499 Fachbereich Chemische Biologie, Fakultät Chemie, Technische Universität Dortmund, Otto-Hahn-Strasse 6, 44227 Dortmund (Germany)Search for more papers by this authorHolger Kruse Dipl.-Chem., Holger Kruse Dipl.-Chem. Organisch-Chemisches Institut, Westfälische Wilhelms-Universität Münster (Germany)Search for more papers by this authorStefan Grimme Prof. Dr., Stefan Grimme Prof. Dr. Organisch-Chemisches Institut, Westfälische Wilhelms-Universität Münster (Germany)Search for more papers by this authorKatja Hübel Dr., Katja Hübel Dr. Abteilung Chemische Biologie, Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie, Otto-Hahn-Strasse 11, 44227 Dortmund (Germany), Fax: (+49) 231-133-2499Search for more papers by this authorDaniel Rauh Dr., Daniel Rauh Dr. Chemical Genomics Centre der Max-Planck-Gesellschaft, Dortmund (Germany)Search for more papers by this authorHerbert Waldmann Prof. Dr., Herbert Waldmann Prof. Dr. [email protected] Abteilung Chemische Biologie, Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie, Otto-Hahn-Strasse 11, 44227 Dortmund (Germany), Fax: (+49) 231-133-2499 Fachbereich Chemische Biologie, Fakultät Chemie, Technische Universität Dortmund, Otto-Hahn-Strasse 6, 44227 Dortmund (Germany)Search for more papers by this author First published: 30 July 2010 https://doi.org/10.1002/anie.201002138Citations: 239 † This research was supported by the Max-Planck-Gesellschaft, the Fonds der Chemischen Industrie, and the German Federal Ministry for Education (Grant No. BMBF 01GS08102). We thank Dr. Matthias Baumann, Lead Discovery Center GmbH, for physicochemical studies. Read the full textAboutPDF ToolsRequest permissionExport citationAdd to favoritesTrack citation ShareShare Give accessShare full text accessShare full-text accessPlease review our Terms and Conditions of Use and check box below to share full-text version of article.I have read and accept the Wiley Online Library Terms and Conditions of UseShareable LinkUse the link below to share a full-text version of this article with your friends and colleagues. Learn more.Copy URL Graphical Abstract The best of 40 000: Detailed structure–activity-relationship studies revealed key structural elements of indolin-2-on-3-spirothiazolidinones (see example) and their appropriate configuration for strong inhibitory activity against the pathophysiologically relevant title protein. Citing Literature Supporting Information Detailed facts of importance to specialist readers are published as ”Supporting Information”. Such documents are peer-reviewed, but not copy-edited or typeset. They are made available as submitted by the authors. Filename Description anie_201002138_sm_miscellaneous_information.pdf367.5 KB miscellaneous_information Please note: The publisher is not responsible for the content or functionality of any supporting information supplied by the authors. Any queries (other than missing content) should be directed to the corresponding author for the article. Volume49, Issue34August 9, 2010Pages 5902-5905 RelatedInformation
5

UNCG RNA tetraloop as a formidable force-field challenge for MD simulations

Klaudia Mráziková et al.Jul 29, 2020
ABSTRACT Explicit solvent atomistic molecular dynamics (MD) simulations represent an established technique to study structural dynamics of RNA molecules and an important complement for diverse experimental methods. However, performance of molecular mechanical (MM) force fields ( ff s) remains far from satisfactory even after decades of development, as apparent from a problematic structural description of some important RNA motifs. Actually, some of the smallest RNA molecules belong to the most challenging systems for MD simulations and, among them, the UNCG tetraloop is saliently difficult. We report a detailed analysis of UNCG MD simulations, depicting the sequence of events leading to the loss of the UNCG native state during MD simulations. We identify molecular interactions, backbone conformations and substates that are involved in the process. The total amount of MD simulation data analyzed in this work is close to 1.3 millisecond. Then, we unravel specific ff deficiencies using diverse quantum mechanical/molecular mechanical (QM/MM) and QM calculations. Comparison between the MM and QM methods shows discrepancies in the description of the 5’-flanking phosphate moiety and both signature sugar-base interactions. Our work indicates that poor behavior of the UNCG tetraloop in simulations is a complex issue that cannot be attributed to one dominant and straightforwardly correctable factor. Instead, there is a concerted effect of multiple ff inaccuracies that are coupled and amplifying each other. We attempted to improve the simulation behavior by some carefully-tailored interventions but the results are still far from satisfactory, underlying the difficulties in development of accurate nucleic acids ff s.
5
Paper
Citation1
0
Save
4

Optimal clustering for quantum refinement of biomolecular structures: Q|R#4

Yaru Wang et al.Nov 24, 2022
Abstract Quantum refinement (Q|R) of crystallographic or cryo-EM derived structures of biomolecules within the Q|R project aims at using ab initio computations instead of library-based chemical restraints. An atomic model refinement requires the calculation of the gradient of the objective function. While it is not a computational bottleneck in classic refinement it is a roadblock if the objective function requires ab initio calculations. A solution to this problem adopted in Q|R is to divide the molecular system into manageable parts and do computations for these parts rather than using the whole macromolecule. This work focuses on the validation and optimization of the automatic divide-and-conquer procedure developed within the Q|R project. Also, we propose an atomic gradient error score that can be easily examined with common molecular visualization programs. While the tool is designed to work within the Q|R setting the error score can be adapted to similar fragmentation methods. The gradient testing tool presented here allows a priori determination of the computationally efficient strategy given available resources for the potentially time-expensive refinement process. The procedure is illustrated using a peptide and small protein models considering different quantum mechanical (QM) methodologies from Hartree-Fock, including basis set and dispersion corrections, to the modern semi-empirical method from the GFN-xTB family. The results obtained provide some general recommendations for the reliable and effective quantum refinement of larger peptides and proteins.
Load More