Goose circovirus (GoCV) is a common pathogen that causes immunosuppression and promotes secondary infections with other infectious agents in geese worldwide. In the present study, we identified GoCV in 2 out of 93 duck flocks from China and successfully sequenced the complete genomes of 2 strains (AH22du and HN20du). The whole genome of the two strains shared a high identity of 90.5 to 98.63% with China GoCV reference, and low identity of 58.98% with DuCV reference, respectively. Phylogenetic tree constructed on the two and other genome sequences of GoCV revealed three main branches. Both strains sequenced in this study were distributed on different sub-branches with most other Chinese GoCV strains, and AH22du clustered into an independent sub-branch within the cluster. Recombination analysis predicted that HN20du might potentially recombine from the major parent of yk4 (Zhejiang Province, China, 2007) and minor parent of GD/YJ/g2 (Guangdong Province, China, 2020). To the best of our knowledge, this is the first report of GoCV in ducks from China. This broadened host spectrum of GoCVs requires attention from the waterfowl industry and researchers.

Avian gyrovirus 2 (AGV2), which is similar to chicken infectious anemia virus, is a new member of the Circovirus genus. AGV2 has been detected not only in chicken but also in human tissues and feces. In this study, a total of 91 samples (8 liver tissues and 83 faecal samples) collected from king-ratsnakes (Elaphe carinata) at 7 separate farms in Hubei and Henan, China, were analyzed to detect AGV2 DNA via specific PCR. The results indicated a low positive rate of AGV2 (6.59%, 6/91) in the studied animals, and all of the positive samples were from the same farm. The AGV2 strain HB2018S1 was sequenced, and the genome with a total length of 2376 nt contained three partially overlapping open reading frames: VP1, VP2, and VP3. Phylogenetic tree analysis revealed that the HB2018S1, NX1506-1 strain from chickens in China belong to the same clade, with nucleotide homology as high as 99.5%. In total, 10 amino acid mutation sites, including 44R/K, 74T/A, 256 C/R, 279L/Q, and 373V/A in AGV2 VP1; 60I/T, 125T/I, 213D/N, and 215L/S in AGV2 VP2; and 83H/Y in AGV2 VP3, were found in the genome of HB2018S1 that were different from those observed in most reference strains, suggesting that the differences are related to an transboundary movement among hosts which needs to be further elucidated.

Bufavirus (BuV) was first identified in feces from children with acute diarrhea, and a genetically related Canine bufavirus (CBuV) was first reported in Italy in 2018. In this study, through the investigation of CBuV in 622 anal swabs from dogs with diarrhea symptoms collected from various provinces in northern, central and eastern China during 2018-2022, 14 samples were detected to be positive. And 5 samples were from dogs co-infected with other canine diarrhea related viruses, which consist of CPV-2, CDV and CCoV. The complete genome sequences (4219 nt) of the fourteen strains were amplified and sequenced. Through comparative analysis with 51 reference BuV strains, six strains might recombinate from the CBuV strains (HUN/2012/22, CaBuV/9AS/2005/ITA and CaBuV/35/2016/ITA) in Hungary and Italy as the parents, and two genetic recombination events from various parents were predicted to occur on the BUV-422 strain. Combined analyzing the phylogenetic tree and sequence alignment, it was found that these CBuVs are highly conserved in the nonstructural protein NS1, but indeed various amino acid mutation sites in the capsid protein VP2, and even some amino acid sites coincide with putative protein plastic regions and potential epitopes. The BUV-422 and BUV-512 strains show sequential mutation sites identical to the divergent strains of CaBuV/9AS/2005/ITA and CaBuV/35/2016/ITA. This study would enrich the molecular data of CBuV in China and provide essential reference for the epidemiological research and vaccine development of CBuV in the future.

Gyrovirus galga1 (GyVg1), formerly known as AGV2, was initially identified in chickens in southern Brazil. The prevalence of GyVg1 from 2021 to 2024 in 28 out of the 63 poultry farms located in Jiangsu, Anhui, Henan, Hunan, Shandong, and Hubei provinces in eastern and central China was detected via PCR. The complete genomes of the 28 strains were sequenced and exhibited a full length of 2,376 bp. Similarity analysis of these strains did not suggest definite correlation with evolutionary branching and geographical distribution. Compared with the reference GyVg1 strains, HN2202 shared the highest similarity of 99.71% with HLJ1511 (chicken-originated) from northeastern China in 2015 to 2016. Recombination analysis revealed that AH2102 was a potential recombinant of peafowl-originated HN2019-PF1 and chicken-originated HLJ1506-2, whereas HN2304 was a recombinant of peafowl-originated HN2019-PF1 and the Hungarian ferret strain G13. Mutation site analysis of the capsid protein revealed that highly mutated regions occurred between sites 288 to 316 and 383 to 419. These results indicate that GyVg1 may have undergone an interspecies transmission, which involved complex mutations and recombination. This study may provide a reference for subsequent investigations targeting the molecular epidemiology and viral evolution of GyVg1.