Abstract Anadromous salmonids begin life adapted to the freshwater environments of their natal streams before a developmental transition, known as smoltification, transforms them into marine-adapted fish. In the wild, the extending photoperiods of spring stimulates smoltification, typified by radical reprogramming of the gill from an ion-absorbing organ to ion-excreting organ. Prior work has highlighted the role of specialized “mitochondrion-rich” cells in delivering this phenotype. However, transcriptomic studies identify thousands of smoltification-driven differentially regulated genes, indicating that smoltification causes a multifaceted, multicellular change; but direct evidence of this is lacking. Here, we use single-nuclei RNAseq to characterize the Atlantic salmon gill during smoltification and seawater transfer. We identify 20 distinct clusters of nuclei, including known, but also novel gill cell types. These data allow us to isolate cluster-specific, smoltification-induced changes in gene expression. We also show how cellular make-up of the gill changes through smoltification. As expected, we noted an increase in the proportion of seawater mitochondrion-rich cells, however, we also identify a reduction of several immune-related cells. Overall, our results provide unrivaled detail of the cellular complexity in the gill and suggest that smoltification triggers unexpected immune reprogramming directly preceding seawater entry.

Across taxa, circadian control of physiology and behaviour arises from cell-autonomous oscillations in gene expression, governed by a networks of so-called ‘clock genes’, collectively forming transcription-translation feedback loops. In modern vertebrates, these networks contain multiple copies of clock gene family members, which arose through whole genome duplication (WGD) events during evolutionary history. It remains unclear to what extent multiple copies of clock gene family members are functionally redundant or have allowed for functional diversification. We addressed this problem through an analysis of clock gene expression in the Atlantic salmon, a representative of the salmonids, a group which has undergone at least 4 rounds of WGD since the base of the vertebrate lineage, giving an unusually large complement of clock genes. By comparing expression patterns across multiple tissues, and during development, we present evidence for strong gene- and tissue-specific divergence in expression patterns, consistent with functional diversification. Unexpectedly, we found a clear link between cortisol secretion and non-circadian changes in the expression of a subset of clock genes in the salmon gill. This regulation is linked to changes in gill function necessary for the transition from fresh- to sea-water in anadromous fish, and, in contrast to mammals, we find no evidence for coupling between cortisol and circadian expression of salmon clock genes. Overall, this analysis emphasises the potential for a richly diversified clock gene network to serve a mixture of circadian and non-circadian functions in vertebrate groups with complex genomes.Author Summary The generation of daily (circadian) rhythms in behaviour and physiology depends on the activities of networks of so-called clock genes. In vertebrates, these have become highly complex due to a process known as whole genome duplication, which has occurred repeatedly during evolutionary history, giving rise to additional copies of key elements of the clock gene network. It remains unclear whether this results in functional redundancy, or whether it has permitted new roles for clock genes to emerge. Here, based on studies in the Atlantic salmon, a species with an unusually large complement of clock genes, we present evidence in favour of the latter scenario. We observe marked tissue-specific, and developmentally-dependent differences in the expression patterns of duplicated copies of key clock genes, and we identify a subset of clock genes whose expression is associated with the physiological preparation to migrate to sea, but is independent of circadian regulation. Associated with this, cortisol secretion is uncoupled from circadian organisation, contrasting with the situation in mammals. Our results indicate that whole genome duplication has permitted clock genes to diversify into non-circadian functions, and raise interesting questions about the ubiquity of mammal-like coupling between circadian and endocrine function.

The developmental transition of juvenile salmon from a freshwater resident morph (parr) to a seawater (SW) migratory morph (smolt) requires a range of physiological adaptations, including the capacity to hypo-osmoregulate. This process, known as smolting, involves both photoperiod-dependent preparative changes before SW is encountered, and activational changes stimulated by exposure to SW. To explore the relationship between these two aspects we undertook experiments in which physiological and transcriptomic responses to SW-challenge were assessed in fish that had experienced different histories of photoperiodic exposure. Compared to fish held on constant light (LL), exposure to short photoperiod (SP) dramatically impaired hypo-osmoregulation in SW, and was associated with extensive glucocorticoid-related changes in gill gene expression. Additionally, a major effect of photoperiodic history was observed in the transcriptional response of LL-acclimated fish to SW, with the response profiles of fish held on LL throughout life being quite distinctive from those of fish which had experienced an 8 week period of exposure to SP prior to return to LL (SPLL). These differences in profile likely reflect a diminishing role for NFAT-mediated responses in SPLL fish, as pathways linked to acute changes in cellular tonicity or intracellular calcium levels decline in importance with preparation for SW.