Abstract Background Identified genetic mutations cause 20% of frontotemporal dementia (FTD) and 5-10% of amyotrophic lateral sclerosis (ALS) cases: however, for the remainder of patients the origin of the disease is uncertain. The overlap in genetic, clinical and pathological presentation of FTD and ALS suggests these two diseases are related. Post-mortem, 97% of ALS and ∼50% of FTD patients show redistribution of the nuclear proteins TDP-43 or FUS to the cytoplasm within affected neurons. We exploited this predominant neuropathological feature to develop an automated method for the quantification of cytoplasmic TDP-43 and FUS in human cell lines. Results Utilising fluorescently-tagged cDNA constructs to identify cells of interest, the fluorescence intensity of TDP-43 or FUS was measured in the nucleus and cytoplasm of HEK293 and SH-SY5Y cells. Confocal microscope images were input into the freely available software CellProfiler, which was used to isolate and measure the two cellular compartments. Significant increases in the amount of cytoplasmic TDP-43 and FUS were detectable in cells expressing known ALS-causative TARDBP and FUS gene mutations. Pharmacological intervention with the apoptosis inducer staurosporine also induced measurable cytoplasmic mislocalisation of endogenous FUS. Additionally, this technique was able to detect the subtler effect of mutation in a secondary gene ( CYLD ) on endogenous TDP-43 localisation. Conclusions These findings validate this methodology as a novel in vitro technique for the quantification of TDP-43 or FUS mislocalisation that can be used to assess the pathogenicity of predicted FTD- or ALS-causative mutations.

Abstract Background Frontotemporal dementia (FTD) is one of the most common forms of younger-onset dementia. FTD is genetically, pathologically and clinically related to amyotrophic lateral sclerosis (ALS), a rapidly progressive neurodegenerative disorder. Mutations in TANK-binding kinase 1 ( TBK1 ) have been identified as a rare cause of FTD and ALS. TBK1 has known roles in inflammation and autophagy and interacts with other FTD and ALS proteins such as optineurin (OPTN): however, which of its roles are important to FTD/ALS pathogenesis remains undetermined. To date, >90 TBK1 rare variants have been identified in FTD/ALS patients: >50% of these are missense variants of unknown significance (VUS). Methods In this study, we have used a functional assay pipeline to investigate the effect of 16 TBK1 VUS with in-silico evidence of pathogenicity, together with two known pathogenic mutations and a common benign TBK1 polymorphism. Our assay pipeline evaluated the effect of TBK1 VUS on steady-state levels of TBK1, kinase activity and binding to OPTN. We also assessed the impact of TBK1 VUS on a key neuropathological feature of FTD and ALS cases: mislocalisation of neuronal TDP-43 from the nucleus to the cytoplasm. Results We observed some TBK1 VUS that had similar effects to TBK1 loss-of-function mutations, demonstrating decreased kinase activity and loss of OPTN binding. Both known pathogenic mutations and several TBK1 VUS also increased the cytoplasmic/nuclear ratio of TDP-43 and this inversely correlated with their degree of OPTN binding but not with kinase activity. Conclusions These results suggest that loss of the direct interaction between TBK1 and OPTN is more critical to FTD and ALS pathogenesis than TBK1’s kinase activity. However, further studies are needed to elucidate exactly how loss of TBK1 binding to OPTN leads to TDP-43 pathology and ultimately neurodegeneration.