Rapid diagnosis and treatment of infectious meningitis and encephalitis are critical to minimize morbidity and mortality. Comprehensive testing of cerebrospinal fluid (CSF) often includes Gram stain, culture, antigen detection, and molecular methods, paired with chemical and cellular analyses. These methods may lack sensitivity or specificity, can take several days, and require significant volume for complete analysis. The FilmArray Meningitis/Encephalitis (ME) Panel is a multiplexed in vitro diagnostic test for the simultaneous, rapid (∼1-h) detection of 14 pathogens directly from CSF specimens: Escherichia coli K1, Haemophilus influenzae, Listeria monocytogenes, Neisseria meningitidis, Streptococcus pneumoniae, Streptococcus agalactiae, cytomegalovirus, enterovirus, herpes simplex virus 1 and 2, human herpesvirus 6, human parechovirus, varicella-zoster virus, and Cryptococcus neoformans/Cryptococcus gattii We describe a multicenter evaluation of 1,560 prospectively collected CSF specimens with performance compared to culture (bacterial analytes) and PCR (all other analytes). The FilmArray ME Panel demonstrated a sensitivity or positive percentage of agreement of 100% for 9 of 14 analytes. Enterovirus and human herpesvirus type 6 had agreements of 95.7% and 85.7%, and L. monocytogenes and N. meningitidis were not observed in the study. For S. agalactiae, there was a single false-positive and false-negative result each, for a sensitivity and specificity of 0 and 99.9%, respectively. The specificity or negative percentage of agreement was 99.2% or greater for all other analytes. The FilmArray ME Panel is a sensitive and specific test to aid in diagnosis of ME. With use of this comprehensive and rapid test, improved patient outcomes and antimicrobial stewardship are anticipated.

ABSTRACT The appropriate treatment and control of infectious gastroenteritis depend on the ability to rapidly detect the wide range of etiologic agents associated with the disease. Clinical laboratories currently utilize an array of different methodologies to test for bacterial, parasitic, and viral causes of gastroenteritis, a strategy that suffers from poor sensitivity, potentially long turnaround times, and complicated ordering practices and workflows. Additionally, there are limited or no testing methods routinely available for most diarrheagenic Escherichia coli strains, astroviruses, and sapoviruses. This study assessed the performance of the FilmArray Gastrointestinal (GI) Panel for the simultaneous detection of 22 different enteric pathogens directly from stool specimens: Campylobacter spp., Clostridium difficile (toxin A/B), Plesiomonas shigelloides , Salmonella spp., Vibrio spp., Vibrio cholerae , Yersinia enterocolitica , enteroaggregative E. coli , enteropathogenic E. coli , enterotoxigenic E. coli , Shiga-like toxin-producing E. coli ( stx 1 and stx 2 ) (including specific detection of E. coli O157), Shigella spp./enteroinvasive E. coli , Cryptosporidium spp., Cyclospora cayetanensis , Entamoeba histolytica , Giardia lamblia , adenovirus F 40/41, astrovirus, norovirus GI/GII, rotavirus A, and sapovirus. Prospectively collected stool specimens ( n = 1,556) were evaluated using the BioFire FilmArray GI Panel and tested with conventional stool culture and molecular methods for comparison. The FilmArray GI Panel sensitivity was 100% for 12/22 targets and ≥94.5% for an additional 7/22 targets. For the remaining three targets, sensitivity could not be calculated due to the low prevalences in this study. The FilmArray GI Panel specificity was ≥97.1% for all panel targets. The FilmArray GI Panel provides a comprehensive, rapid, and streamlined alternative to conventional methods for the etiologic diagnosis of infectious gastroenteritis in the laboratory setting. The potential advantages include improved performance parameters, a more extensive menu of pathogens, and a turnaround time of as short as 1 h.

Medical microbiologists, defined as doctoral-level laboratory directors with subspecialty training in medical microbiology, lead the clinical laboratory operations through activities such as clinical consultations, oversight of diagnostic testing menu, institutional leadership, education, and scholastic activities. However, unlike their clinical colleagues, medical microbiologists are largely unable to bill for clinical consultations performed within the hospital and, therefore, unable to generate relative value units or a similar quantifiable metric. As hospital budgets tighten and justification of staffing becomes a necessity, this may present a challenge to the medical microbiologist attempting to prove their value to the organization. To aid in providing tangible data, the Personnel Standards and Workforce subcommittee of the American Society for Microbiology conducted a multi-center study across seven medical centers to document clinical consultations and their impact. Consults were generated equally from internal (laboratory-based) and external (hospital-based) parties, with the majority directly impacting patient management. Near universal acceptance of the medical microbiologist's recommendation highlights the worth derived from their expertise. External consults required more time commitment from the medical microbiologist than internal consults, although both presented ample opportunity for secondary value, including impact through stewardship, education, clinical guidance, and cost reduction. This study is a description of the content and impact of consultations that underscore the importance of the medical microbiologist as a key member of the healthcare team.

Measles, mumps, and rubella(MMR) vaccination is critical to measles outbreak responses. However, vaccine reactions and detection of measles vaccine RNA in recently immunized persons may complicate case classification especially in those presenting with another respiratory viral illness. We aim to characterize cases of measles vaccine shedding in recently vaccinated children presenting with respiratory viral symptoms.

Abstract Objective The objective of this study was to determine the frequency of common gastrointestinal bacterial, parasitic, and viral pathogen detection in necrotizing enterocolitis (NEC) or spontaneous intestinal perforation (SIP) -associated intestinal tissue. Study design Retrospective cohort study examined formalin fixed, paraffin embedded (FFPE) surgical or autopsy intestinal tissue from NEC or SIP specimens. DNA and RNA were extracted and analyzed by multiplex PCR panel (GIFA Biofire). DNA or RNA from stool samples containing each pathogen were extracted for positive controls. Results The total number of intestinal tissue samples were 193 from 310 infants (156 NEC, 37 SIP). Six (3%) infants with stage III NEC tested positive for a target pathogen; 2, C. difficile; 3, Enteroaggregtive E. coli ; and 1, Giardia . No gastrointestinal viral pathogens were detected. Conclusion Molecular testing yielded few GI pathogens suggesting that these organisms are likely not major causes or facilitators of NEC or SIP.

Health-care and public health professionals rely on accurate, real-time monitoring of infectious diseases for outbreak preparedness and response. Early detection of outbreaks is improved by systems that are pathogen-specific. We describe a system, FilmArray® Trend, for rapid disease reporting that is syndrome-based but pathogen-specific. Results from a multiplex molecular diagnostic test are sent directly to a cloud database. www.syndromictrends.com presents these data in near real-time. Trend preserves patient privacy by removing or obfuscating patient identifiers. We summarize the respiratory pathogen results, for 20 organisms from 344,000 patient samples acquired as standard of care testing over the last four years from 20 clinical laboratories in the United States. The majority of pathogens show influenza-like seasonality, rhinovirus has fall and spring peaks and adenovirus and bacterial pathogens show constant detection over the year. Interestingly, the rate of pathogen co-detections, on average 7.7%, matches predictions based on the relative abundance of organisms present.

Abstract Rhinoviruses (RVs) are a leading cause of acute respiratory infections (ARI) in children. The relationship between RV viral loads (VL), RV/viral‐co‐detections and disease severity, is incompletely understood. We studied children and adolescents ≤21 years with RV‐ARI that were identified as inpatients or outpatients using a PCR panel from 2011‐2013. RV VL were stratified according to cycle threshold (CT) values in high (≤25), intermediate (26‐32) and low (>32). Adjusted analyses were performed to assess the role RV VL and RV/viral codetections on hospital admission, oxygen requirement, PICU care, and length of stay. Of 1,899 children with RV‐ARI, 78% had chronic comorbidities and 24% RV/viral co‐detections. Single RV vs RV/viral co‐detections was associated with higher VL (24.74 vs 26.62 CT; p = 0.001) and older age (14.9 vs 9.5 months; p = 0.0001). Frequency of RV/viral co‐detections were inversely proportional to RV loads: 32% with low; 28% with intermediate, and 19% with high VL, p = 0.0001. Underlying conditions were independently associated with all clinical outcomes, high VL with PICU care, and single RV‐ARI with higher odds of hospitalization. In summary, single RV vs RV/viral co‐detections were associated with higher VL and older age. Underlying diseases, rather than RV loads or RV/viral co‐detections, consistently predicted worse clinical outcomes.