Abstract HIV has been reported to be cytotoxic in vitro and in lymph node infection models. Using a computational approach, we found that partial inhibition of transmission which involves multiple virions per cell could lead to increased numbers of live infected cells if the number of viral DNA copies remains above one after inhibition, as eliminating the surplus viral copies reduces cell death. Using a cell line, we observed increased numbers of live infected cells when infection was partially inhibited with the antiretroviral efavirenz or neutralizing antibody. We then used efavirenz at concentrations reported in lymph nodes to inhibit lymph node infection by partially resistant HIV mutants. We observed more live infected lymph node cells, but with fewer HIV DNA copies per cell, relative to no drug. Hence, counterintuitively, limited attenuation of HIV transmission per cell may increase live infected cell numbers in environments where the force of infection is high.

Human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) replicates in CD4+ T cells leading to profound T cell loss, immunological dysfunction and AIDS. Determining how HIV-1 shapes the immunological niche in which it resides to create a permissive environment is central to informing efforts to limit pathogenesis, disturb viral reservoirs and achieve a cure. A key roadblock in understanding HIV-T cell interactions is the requirement to activate CD4+ T cells in vitro in order to make them permissive to infection. This dramatically alters T cell biology, obscuring native virus-host interactions. Here we show that HIV-1 cell-to-cell spread permits efficient and productive infection of resting CD4+ T cells without the need for prior activation. Infection is preferential for resting memory T cells, is observed with both CXCR4-tropic virus and CCR5-tropic transmitter-founder viruses and results in virus production and onward spreading infection. Strikingly, we find that HIV-1 infection of resting memory CD4+ T cells primes for induction of a tissue-resident memory (T RM )-like phenotype evidenced by upregulation of T RM markers CD69/CXCR6 alongside co-expression of CD49a, PD-1, CD101 as well as transcription factor Blimp-1. Furthermore, we reveal that HIV-1 initiates a transcriptional program that overlaps with the core T RM transcriptional signature. This reprograming depends on the HIV-1 accessory protein Vpr. We propose that HIV-1 infection drives a CD4+ T RM -phenotype potentially sequestering infected cells within tissues to support viral replication and persistence.