Functional genomics employs several experimental techniques to investigate gene functions. These techniques such as loss-of-function screening and transcriptome profiling performed in a high-throughput manner give as result a list of genes involved in the biological process of interest. There exist several computational methods for analysis and interpretation of the list. The most widespread methods aim at investigation of biological processes significantly represented in the list or at extracting significantly represented subnetworks. Here we present a new exploratory network analysis method that employs the shortest path approach and centrality measure to uncover members of active molecular pathways leading to the studied phenotype based on the results of functional genomics screening data. We present the method and we demonstrate what data can be retrieved by its application to the terminal muscle differentiation miRNA loss-of-function screening and transcriptomic profiling data and to the 'druggable' loss-of-function RNAi screening data of the DNA repair process.

SUMMARY There is compelling evidence that cancer stem cells (CSCs) play an essential role in failure of conventional antitumor therapy. In breast cancer, CD24 -/low /CD44 + phenotype as well as a high aldehyde dehydrogenase activity (ALDH + ) are widely associated with CSC subtypes. Furthermore, CD24 -/low /CD44 + pattern is also characteristic of the mesenchymal cells generated by an epithelial-mesenchymal transition (EMT). CD24 is a surface marker expressed in many tumor types, however, its biological functions and role in cancer progression and treatment resistance remain poorly documented. We have previously shown that loss of CD24 expression in breast cancer cells is associated with radiation resistance, in relationship with the control of oxidative stress. Because ROS are known to mediate the effects of anticancer drugs as well as ionizing radiation, we investigated if CD24 could be defined as an actor of both radiation- and chemo-resistance of breast cancer cells. Using the HMLE breast cancer cell model, we observed that loss of CD24 expression induces stemness properties associated with the acquisition of a hybrid E/M phenotype. The CD24 -/low cells were intrinsically more resistant than CD24 + cells. The resistance was linked to a lower level of ROS, and CD24 controlled ROS levels through the regulation of mitochondrial functions independently of antioxidant activity. Together, these results suggest a key role of CD24 in de-differentiation process of breast cancer cells, promoting acquisition of therapeutic resistance properties.

ABSTRACT The DNA-glycosylase OGG1 oversees the detection and clearance of the 7,8-dihydro-8-oxoguanine (8-oxoG), which is the most frequent form of oxidized base in the genome. This lesion is deeply buried within the double-helix and its detection requires careful inspection of the bases by OGG1 via a mechanism that remains only partially understood. By analyzing OGG1 dynamics in the nucleus of living human cells, we demonstrate that the glycosylase constantly scans the DNA by rapidly alternating between diffusion within the nucleoplasm and short transits on the DNA. This scanning process, that we find to be tightly regulated by the conserved residue G245, is crucial for the rapid recruitment of OGG1 at oxidative lesions induced by laser micro-irradiation. Furthermore, we show that residues Y203, N149 and N150, while being all involved in early stages of 8-oxoG probing by OGG1 based on previous structural data, differentially regulate the scanning of the DNA and recruitment to oxidative lesions.

Summary Many endocrine disruptors have been proven to impair the meiotic process that is mandatory to produce healthy gametes. Bisphenol A is emblematic as it impairs meiotic prophase I and causes oocyte aneuploidy following in utero exposure. However, the mechanisms underlying these deleterious effects remain poorly understood. Furthermore, the increasing uses of BPA analogs raise concerns for public health. Here, we investigated the effect on oogenesis in mouse of fetal exposure to two BPA analogs, Bisphenol A Diglycidyl Ether (BADGE) or Bisphenol AF (BPAF). These analogs delay meiosis initiation, increase MLH1 foci per cell and induce oocyte aneuploidy. We further demonstrate that these defects are accompanied by a deregulation of gene expression and aberrant mRNA splicing in fetal premeiotic germ cells. Interestingly, we observed an increase in DNA oxidation after exposure to BPA analogs. Specific induction of oxidative DNA damages during fetal germ cell differentiation causes similar defects during oogenesis, as observed in 8-Oxoguanine DNA Glycosylase (OGG1) deficient mice or after in utero exposure to potassium bromate (KBrO3), an inducer of oxidative DNA damages. Moreover, the supplementation of N-acetylcysteine (NAC) with BPA analogs counteracts the bisphenol-induced meiotic effect. Together our results position oxidative stress as a central event that negatively impacts the female meiosis with major consequences on oocyte quality. This could be a common mechanism of action for so called endocrine disruptors pollutants and it could lead to novel strategies for reprotoxic compounds.