Abstract RNA splicing is crucial in the multilayer regulatory networks for gene expression, making functional interactions with DNA‐ and other RNA‐processing machineries in the nucleus. However, these established couplings are all major spliceosome‐related; whether the minor spliceosome is involved remains unclear. Here, through affinity purification using Drosophila lysates, an interaction is identified between the minor spliceosomal 65K/RNPC3 and ANKRD11, a cofactor of histone deacetylase 3 (HDAC3). Using a CRISPR/Cas9 system, Deletion strains are constructed and found that both Dm65K Δ/Δ and Dmankrd11 Δ/Δ mutants have reduced histone deacetylation at Lys9 of histone H3 (H3K9) and Lys5 of histone H4 (H4K5) in their heads, exhibiting various neural‐related defects. The 65K‐ANKRD11 interaction is also conserved in human cells, and the HsANKRD11 middle‐uncharacterized domain mediates Hs65K association with HDAC3. Cleavage under targets and tagmentation (CUT&Tag) assays revealed that HsANKRD11 is a bridging factor, which facilitates the synergistic common chromatin‐binding of HDAC3 and Hs65K. Knockdown (KD) of HsANKRD11 simultaneously decreased their common binding, resulting in reduced deacetylation of nearby H3K9. Ultimately, this study demonstrates that expression changes of many genes caused by HsANKRD11‐KD are due to the decreased common chromatin‐binding of HDAC3 and Hs65K and subsequently reduced deacetylation of H3K9, illustrating a novel and conserved coupling mechanism that links the histone deacetylation with minor spliceosome for the regulation of gene expression.

Abstract Identification oncogenes is fundamental to revealing the molecular basis of cancer. Here, we found that FOXP2 is overexpressed in human prostate cancer cells and prostate tumors, but its expression is absent in normal prostate epithelial cells and low in benign prostatic hyperplasia. To date, little is known regarding the link of FOXP2 to prostate cancer. We observed that high FOXP2 expression and frequent amplification are significantly associated with high Gleason score. Ectopic expression of FOXP2 induces malignant transformation of mouse NIH3T3 fibroblasts and human prostate epithelial cell RWPE-1. Conversely, FOXP2 knockdown suppresses the proliferation of prostate cancer cells. Transgenic overexpression of FOXP2 in the mouse prostate causes prostatic intraepithelial neoplasia. Overexpression of FOXP2 aberrantly activates oncogenic MET signalling and inhibitors targeting MET signalling effectively reverts the FOXP2 -induced oncogenic phenotype. Additionally, the novel recurrent FOXP2-CPED1 fusion identified in prostate tumors results in high expression of truncated FOXP2, which exhibit a similar capacity for malignant transformation. Together, our data demonstrate for the first time that FOXP2 is an oncogene involved in tumorigenicity of prostate.