Poor post-vaccination production of antibody against severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) is a concern among solid organ transplant (SOT) recipients. Furthermore, the timing and kinetics of antibody titers after the second vaccine dose are unknown. We conducted a multicenter prospective observational study that included 614 SOT recipients: 460 kidney, 53 heart, 50 liver, 20 lung, and 31 simultaneous pancreas-kidney (SPK). The participants received two doses of the mRNA vaccine (Pfizer BNT162b2 or Moderna mRNA-1273), as indicated. Serum samples were collected before the first and second vaccinations and at 1, 3, and 6 months after the second vaccine dose, which were then assessed for SARS-CoV-2 antibodies. The overall seropositivity rate was 43% at 1 month after administration of the second vaccine dose; it gradually increased to 68% at 3 months after second dose administration and to 70% at 6 months. In addition, recipient of kidney, lung or SPK transplants had lower antibody titers at the 3- and 6-month time points than did the other recipients. SOT recipients acquired SARS-CoV-2 S-IgG antibodies slowly, and the peak titer differed significantly from that of the general population.

Abstract Estimation of dynamic change of crossbridge formation in living cardiomyocytes is expected to provide crucial information for elucidating cardiomyopathy mechanisms, efficacy of an intervention, and other parameters. Here, we developed an assay system to dynamically measure second harmonic generation (SHG) polarization in pulsating cardiomyocyte and proved that the SHG anisotropy derived from myosin filaments in disease-model cardiomyocytes depended on their crossbridge status, providing an evaluation method for myosin force generation. Experiments utilizing an inheritable mutation that induces excessive myosin-actin interactions revealed that the correlation between sarcomere length and SHG anisotropy represents crossbridge formation ratio during pulsation. Furthermore, the present method found that ultraviolet irradiation induced an increased population of attached crossbridges that lost force-generating ability upon myocardial differentiation, causing acquired dysfunction. Taking an advantage of infrared two-photon excitation in SHG microscopy, myocardial dysfunction could be intravitally evaluated in a Drosophila disease model. Thus, along with the establishment of the methodology, we successfully demonstrated the applicability and effectiveness of the present method to evaluate the actomyosin activity of a drug or genetic defect on living cardiomyocytes.