Antibody responses to SARS-CoV-2 can be detected in most infected individuals 10–15 d after the onset of COVID-19 symptoms. However, due to the recent emergence of SARS-CoV-2 in the human population, it is not known how long antibody responses will be maintained or whether they will provide protection from reinfection. Using sequential serum samples collected up to 94 d post onset of symptoms (POS) from 65 individuals with real-time quantitative PCR-confirmed SARS-CoV-2 infection, we show seroconversion (immunoglobulin (Ig)M, IgA, IgG) in >95% of cases and neutralizing antibody responses when sampled beyond 8 d POS. We show that the kinetics of the neutralizing antibody response is typical of an acute viral infection, with declining neutralizing antibody titres observed after an initial peak, and that the magnitude of this peak is dependent on disease severity. Although some individuals with high peak infective dose (ID50 > 10,000) maintained neutralizing antibody titres >1,000 at >60 d POS, some with lower peak ID50 had neutralizing antibody titres approaching baseline within the follow-up period. A similar decline in neutralizing antibody titres was observed in a cohort of 31 seropositive healthcare workers. The present study has important implications when considering widespread serological testing and antibody protection against reinfection with SARS-CoV-2, and may suggest that vaccine boosters are required to provide long-lasting protection. Neutralizing antibody responses of patients infected with SARS-CoV-2 peak at 3–4 weeks post onset of symptoms, then decline to low levels over the course of 3 months in some individuals.

Nature Communications 6: Article number: 6046 (2015); Published 5 February 2015; Updated 6 July 2015 The affiliation details for Emiliano Giardina are incorrect in this Article. The correct address for this author is given below: Department of Biopathology, Centre of Excellence for Genomic Risk Assessment in Multifactorial and Complex Diseases, School of Medicine, University of Rome 'Tor Vergata' and Laboratory of Molecular Genetics UILDM, Fondazione Santa Lucia, Rome 00179, Italy.

Anne Hinks and colleagues identify 14 new susceptibility loci for juvenile idiopathic arthritis through targeted analyses of genomic regions implicated in immune function. Their study implicates several pathways, including IL-2 signaling, in the pathogenesis of this common childhood autoimmune disease. We used the Immunochip array to analyze 2,816 individuals with juvenile idiopathic arthritis (JIA), comprising the most common subtypes (oligoarticular and rheumatoid factor–negative polyarticular JIA), and 13,056 controls. We confirmed association of 3 known JIA risk loci (the human leukocyte antigen (HLA) region, PTPN22 and PTPN2) and identified 14 loci reaching genome-wide significance (P < 5 × 10−8) for the first time. Eleven additional new regions showed suggestive evidence of association with JIA (P < 1 × 10−6). Dense mapping of loci along with bioinformatics analysis refined the associations to one gene in each of eight regions, highlighting crucial pathways, including the interleukin (IL)-2 pathway, in JIA disease pathogenesis. The entire Immunochip content, the HLA region and the top 27 loci (P < 1 × 10−6) explain an estimated 18, 13 and 6% of the risk of JIA, respectively. In summary, this is the largest collection of JIA cases investigated so far and provides new insight into the genetic basis of this childhood autoimmune disease.

Abstract IL-17A+ CD8+ T-cells, often referred to as Tc17 cells, have been identified at sites of inflammation in several immune-mediated inflammatory diseases including psoriasis and spondyloarthritis. Whilst much of our understanding of IL-17A+ CD8+ T-cells has been discerned from murine studies, human IL-17A+ CD8+ T-cells remain less-well characterised. We optimised an in vitro polarisation protocol to expand human IL-17A+ CD8+ T-cells from PBMC or bulk CD8+ T-cell populations for phenotypic and functional assessment. We show that T-cell activation in the presence of IL-1β and IL-23 significantly increased the frequencies of IL-17A+ CD8+ T-cells, which was not further enhanced by the addition of IL-6, IL-2 or anti-IFNγ mAb. In vitro-generated IL-17A+ CD8+ T-cells from healthy donors displayed a distinct type-17 profile compared with IL-17A- CD8+ T-cells, as defined by transcriptional signature ( IL17A, IL17F, RORC, RORA, MAF, IL23R, CCR6, CXCR6 ); high surface expression of CCR6 and CD161; and polyfunctional production of IL-17A, IL-17F, IL-22, IFNγ, TNFα and GM-CSF. A significant proportion of in vitro -induced IL-17A+ CD8+ T-cells expressed TCRVα7.2 and bound MR1 tetramers, indicative of a MAIT CD8+ T-cell population. Using an IL-17A secretion assay, we demonstrate that the in vitro -generated IL-17A+ CD8+ T-cells were biologically functional and induced pro-inflammatory IL-6 and IL-8 production by synovial fibroblasts from patients with psoriatic arthritis. Collectively, we report an in vitro culture system to expand IL-17A+ CD8+ T-cells and further characterise their phenotype, transcriptional regulation and functional relevance to human health and disease.