The current model of apoptosis holds that upstream signals lead to activation of downstream effector caspases. We generated mice deficient in the two effectors, caspase 3 and caspase 7, which died immediately after birth with defects in cardiac development. Fibroblasts lacking both enzymes were highly resistant to both mitochondrial and death receptor-mediated apoptosis, displayed preservation of mitochondrial membrane potential, and had defective nuclear translocation of apoptosis-inducing factor (AIF). Furthermore, the early apoptotic events of Bax translocation and cytochrome c release were also delayed. We conclude that caspases 3 and 7 are critical mediators of mitochondrial events of apoptosis.

The mechanism by which cells undergo death determines whether dying cells trigger inflammatory responses or remain immunologically silent. Mitochondria play a central role in the induction of cell death, as well as in immune signaling pathways. Here, we identify a mechanism by which mitochondria and downstream proapoptotic caspases regulate the activation of antiviral immunity. In the absence of active caspases, mitochondrial outer membrane permeabilization by Bax and Bak results in the expression of type I interferons (IFNs). This induction is mediated by mitochondrial DNA-dependent activation of the cGAS/STING pathway and results in the establishment of a potent state of viral resistance. Our results show that mitochondria have the capacity to simultaneously expose a cell-intrinsic inducer of the IFN response and to inactivate this response in a caspase-dependent manner. This mechanism provides a dual control, which determines whether mitochondria initiate an immunologically silent or a proinflammatory type of cell death.

CTNND1 encodes the p120-catenin (p120) protein, which has a wide range of functions, including the maintenance of cell-cell junctions, regulation of the epithelial-mesenchymal transition and transcriptional signaling. Due to advances in next generation sequencing, CTNND1 has been implicated in human diseases including cleft palate and blepharocheilodontic syndrome (BCD) albeit only recently. In this study, we identify eight novel protein-truncating variants, six de novo, in thirteen participants presenting with craniofacial dysmorphisms including cleft palate and hypodontia, as well as congenital cardiac anomalies, limb dysmorphologies and neurodevelopmental disorders. Using conditional deletions in mice as well as CRISPR/Cas9 approaches to target CTNND1 in Xenopus, we identified a subset of phenotypes that can be linked to p120-catenin in epithelial integrity and turnover, and additional phenotypes that suggest mesenchymal roles of CTNND1. We propose that CTNND1 variants have a wider developmental role than previously described, and that variations in this gene underlie not only cleft palate and BCD but may be expanded to a broader velocardiofacial-like syndrome.

Pediatric cardiomyopathies are mostly attributed to variants in sarcomere-related genes. Unfortunately, the genetic architecture of pediatric cardiomyopathies has never been previously studied in Jordan. We sought to uncover the genetic landscape of 14 patients from nine families with several subtypes of pediatric cardiomyopathies in Jordan using Exome sequencing (ES). Our investigation identified pathogenic and likely pathogenic variants in seven out of nine families (77.8%), clustering in sarcomere-related genes. Surprisingly, phenocopies of sarcomere-related hypertrophic cardiomyopathies were evident in probands with glycogen storage disorder and mitochondrial-related disease. Our study underscored the significance of streamlining ES or expanding cardiomyopathy-related gene panels to identify plausible phenocopies of sarcomere-related cardiomyopathies. Our findings also pointed out the need for genetic testing in patients with cardiomyopathy and their at-risk family members. This can potentially lead to better management strategies, enabling early interventions, and ultimately enhancing their prognosis. Finally, our findings provide an initial contribution to the currently absent knowledge about the molecular underpinnings of cardiomyopathies in Jordan.

Background: Polydactyly is one of the most common hereditary limb malformations, characterized by presence of additional digits in hands and/or feet. It is present either in isolated form or in combination with other features. Preaxial polydactyly with extra digit on the outside of the thumb or big toe, and postaxial polydactyly with extra digit on the outside of the little finger or little toe are the two main forms of polydactyly. Methods and Results: In the present study, two unrelated consanguineous families segregating PAP in an autosomal recessive manner were investigated. Whole exome sequencing, followed by segregation analysis using Sanger sequencing, revealed a homozygous missense variant [c.1792 G>A; p.(Gly598Arg); NM_005631.5] in the SMO in both families. Proteins SMO, PTCH, and GLI act as major components of the Sonic hedgehog pathway, which transmits signals to embryonic cells for cellular differentiation. Homology modeling revealed that the variant in SMO may disrupt proper protein folding and interaction with other molecules. Conclusion: Our study has revealed the second direct involvement of a sequence variant in the SMO causing isolated polydactyly. This study will highlight the importance of the inclusion of the SMO gene in screening individuals presenting polydactyly in hands and feet.

Abstract The Dromedary camel has a remarkable history amongst cultures across Asia and northern Africa, serving multiple purposes ranging from providing milk, textiles, racing, and acting as pack animals. Recent genetic studies have revealed that many dromedaries are genetically homogenous, indicating that they do not represent different breeds, advocating for camel ‘type’ over camel ‘breed’. In this study, we leveraged whole genome sequencing (WGS) to sequence 15 Jordanian Alia camels for the first time, alongside 9 Jordanian mixed camels from diverse locations within the country. Additionally, we analyzed 48 publicly available whole genomes of dromedary camels from the Arabian Peninsula for comparison. We demonstrate that the Alia camel is a distinct breed of camel, carefully bred in Jordan for racing and milk production. Compared to other dromedary camels, the Alia is genetically distinct and a unique breed that should be conserved. Our data further suggest that WGS of different camel populations may identify additional breeds and inform approaches to optimize traits and preserve genetic diversity.