CG
Clair Gallagher
Author with expertise in Ribosome Structure and Translation Mechanisms
Achievements
This user has not unlocked any achievements yet.
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
2
(0% Open Access)
Cited by:
0
h-index:
12
/
i10-index:
15
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

Expanding the Chinese hamster ovary cell long non-coding RNA transcriptome using RNASeq

Krishna Motheramgari et al.Dec 3, 2019
Our ability to study Chinese hamster ovary (CHO) cell biology has been revolutionised over the last decade with the development of next generation sequencing and the publication of reference DNA sequences for CHO cells and the Chinese hamster. RNA sequencing has not only enabled the association of transcript expression with bioreactor conditions and desirable bioprocess phenotypes but played a key role in the characterisation of protein coding and small non-coding RNAs. The annotation of long non-coding RNAs, and therefore our understanding of their role in CHO cell biology, has been limited to date. In this manuscript, we use high resolution RNASeq data to more than double the number of annotated lncRNA transcripts for the CHOK1 genome. In addition, the utilisation of strand specific sequencing enabled the identification of more than 1,000 new lncRNAs located antisense to protein coding genes. The utility of monitoring lncRNA expression is demonstrated through an analysis of the transcriptomic response to a reduction of cell culture temperature and identification of simultaneous sense/antisense differential expression for the first time in CHO cells. To enable further studies of lncRNAs, the transcripts annotated in this study have been made available for the CHO cell biology community.
0

Sub physiological temperature induces pervasive alternative splicing in Chinese hamster ovary cells

Ioanna Tzani et al.Dec 3, 2019
RNA sequencing (RNASeq) has been widely used to associate alterations in Chinese hamster ovary (CHO) cell gene expression with bioprocess phenotypes, however alternative mRNA splicing, has thus far, received little attention. In this study, we utilised RNASeq for transcriptomic analysis of a monoclonal antibody producing CHOK1 cell line subjected to a temperature shift. More than 2,365 instances of differential splicing were observed 24hrs after the reduction of cell culture temperature. 1,163 of these alternative splicing events were identified in genes where no changes in abundance were detected by standard differential expression analysis. Ten examples of alternative splicing were selected for independent validation using qPCR in the monoclonal antibody producing CHOK1 line used for RNASeq and a further 2 CHOK1 cell lines. This analysis provided evidence that exon skipping and mutually exclusive splicing events occur in genes linked to the cellular response to changes in temperature and mitochondrial function. While further work is required to determine the impact of changes in mRNA sequence on cellular phenotype, this study demonstrates that alternative splicing analysis can be utilised to gain a deeper understanding of post-transcriptional regulation in CHO cells during biopharmaceutical production.