Aflatoxin B1, which can penetrate the blood-brain barrier and kill neural cells, can contaminate traditional herbal medicines, posing a significant risk to human health. The present study examined cellular, cognitive and behavioral consequences of aflatoxin B1 contamination of the anti-osteoporotic medicine Radix Dipsaci.

Abstract Microglia cells are the main mediators of neuroinflammation. Activation of microglia often aggravates the pathological process of various neurological diseases. Natural chemicals have unique advantages in inhibiting microglia-mediated neuroinflammation and improving neuronal function. Here, we examined the effects of asperosaponin VI (ASA VI) on LPS-activated primary microglia. Microglia were isolated from mice and pretreated with different doses of ASA VI, following lipopolysaccharide (LPS) administration. Activation and inflammatory response of microglia cells were evaluated by q-PCR, immunohistochemistry and ELISA. Signaling pathways were detected by western blotting. We found that the ASA VI inhibited the morphological expansion of microglia cells, decreased the expression and release of proinflammatory cytokines, and promoted the expression of antiinflammatory cytokines in a dose-dependent manner. ASA VI also activated PPAR-γ signaling pathway in LPS-treated microglia. The anti-inflammatory effects of ASA VI in microglia were blocked by treating PPAR-γ antagonist (GW9662). These results showed that ASA VI promote the transition of microglia cells from proinflammatory to anti-inflammatory by regulating PPAR-γ pathway.

Abstract Background The Gastrodia elata Bl. is an orchid, and its growth demands the presence of Armillaria species. The strong competitiveness of Armillaria species has always been a concern of major threat to other soil organisms, thus disrupting the equilibrium of soil biodiversity. Introducing other species to where G. elata was cultivated, could possibly alleviate the problems associated with the disequilibrium of soil microenvironment; however, their impacts on the soil microbial communities and the underlying mechanisms remain unclear. To reveal the changes of microbial groups associated with soil chemical properties responding to different cultivation species, the chemical property measurements coupled with the next-generation pyrosequencing analyses were applied with soil samples collected from fallow land, cultivation of G. elata and Phallus impudicus , respectively. Results The cultivation of G. elata induced significant increases ( p < 0.05) in soil pH and NO 3 -N content compared with fallow land, whereas subsequent cultivation of P. impudicus reversed these G. elata- induced increases and was also found to significantly increase ( p < 0.05) the content of soil NH 4 + -N and AP. The alpha diversities of soil microbial communities were significantly increased ( p < 0.01) by cultivation of G. elata and P. impudicus as indicated with Chao1 estimator and Shannon index. The structure and composition of soil microbial communities differed responding to different cultivation species. In particular, the relative abundances of Bacillus , norank_o_Gaiellales , Mortierella and unclassified_k_Fungi were significantly increased ( p < 0.05), while the abundances of potentially beneficial genera such as Acidibacter , Acidothermus , Cryptococcus , and Penicillium etc., were significantly decreased ( p < 0.05) by cultivation of G. elata . It’s interesting to find that cultivation of P. impudicus increased the abundances of these genera that G. elata decreased before, which contributed to the difference of composition and structure. The results of CCA and heatmap indicated that the changes of soil microbial communities had strong correlations with soil nutrients. Specifically, among 28 genera presented, 50% and 42.9% demonstrated significant correlations with soil pH and NO 3 -N in response to cultivation of G. elata and P. impudicus . Conclusions Our findings suggested that the cultivation of P . impudicus might have potential benefits as result of affecting soil microorganisms coupled with changes in soil nutrient profile.

Continuous monocropping obstacles are common in plants, especially medicinal plants, resulting in disease outbreaks and productivity reductions. Foliar disease, mainly caused by Fusarium oxysporum, results in a severe decrease in the yield of Pseudostellaria heterophylla annually. Determining an effective biomethod to alleviate this disease is urgently needed to improve its productivity and quality. This study screened thirty-two keystone bacterial genera induced by pathogens in P. heterophylla rhizosphere soil under continuous monocropping conditions. Pseudomonas, Chryseobacterium, and Flavobacterium, referred to as the beneficial microbiota, were significantly attracted by pathogen infection. The P. palleroniana strain B-BH16-1 can directly inhibit the growth and spore formation of seven primary pathogens of P. heterophylla foliar disease by disrupting fusaric acid production via the emission of volatile organic compounds (VOCs). In addition, strain B-BH16-1 enhances the disease resistance of P. heterophylla by obliterating the pathogen and assembling beneficial microbiota. Pathogen-induced Pseudomonas reshaped phyllosphere microbial communities via direct antagonism of pathogens and indirect disruption of the pathogen virulence factor biosynthesis to enhance disease suppression and improve yields. These results show that inhibiting pathogen virulence biosynthesis to reshape the plant microbial community using disease-induing probiotics will be an innovative strategy for managing plant disease, especially under continuous monoculture conditions.

Aim: Indoleamine 2, 3-dioxygenase (IDO) is responsible for the progression of the kynurenine pathway, which has been implicated in the pathophysiology of inflammation-induced depression. It has been reported that asperosaponin VI (ASA VI) could play a neuroprotective role through anti-inflammatory and antioxidant. In this study, we examined the antidepressant effect of ASA VI in LPS-treated mice and further explored its molecular mechanism by insight into the microglial kynurenine pathway. Methods: To produce the model, lipopolysaccharide (LPS) (0.83 mg/kg) was administered intraperitoneally to mice. The mice received ASA VI (10 mg/kg, 20 mg/kg, 40 mg/kg and 80 mg/kg, i.p.) thirty minutes prior to LPS injection. Depressive-like behaviors were evaluated based on the duration of immobility in the forced swim test. Microglial activation and inflammatory cytokines were detected by immunohistochemistry, real-time PCR and ELISA. The TLR4/NF-κB signaling pathway and the expression of IDO, GluA2, and CamKIIβ were measured by western blotting. Results: ASA VI demonstrated significant antidepressant activity in the presence of LPS on immobility and latency times in the forced swim test. The LPS-induced activation of microglia and inflammatory response were inhabited by ASA VI in a dose-dependent manner. TLR4/NF-κB signaling pathway also was suppressed by ASA VI in the hippocampus and prefrontal cortex of LPS-treated mice. Furthermore, ASA VI inhibited the increase in IDO protein expression and normalized the aberrant glutamate transmission in the hippocampus and prefrontal cortex as a result of LPS administration. Conclusion: Our results propose a promising antidepressant effect for ASA VI possibly through the downregulation of IDO expression and normalization of the aberrant glutamate transmission. This remedying effect of ASA VI could be attributed to suppress microglia-mediated neuroinflammatory response via inhibiting the TLR4/NF-κB signaling pathway.