The lymphoid tyrosine phosphatase (LYP), encoded by the protein tyrosine phosphatase-22 (PTPN22) gene, is a powerful inhibitor of T cell activation. Recently, a single nucleotide polymorphism (SNP), encoding a functional arginine to tryptophan residue change at LYP codon 620 has been shown to be associated with type 1 diabetes and other autoimmune disorders. We have used a PCR-restriction fragment (XcmI) assay to examine genotypes at the codon 620 polymorphism in 549 unrelated probands with Graves' disease, 104 unrelated subjects with autoimmune Addison's disease and 429 controls. The T nucleotide at the SNP, encoding the tryptophan 620 residue, was present in 151 of 1098 (13.8%) Graves' disease alleles compared to 67 of 858 (7.8%) control alleles (χ2 = 17.2, p = 3.4 × 10−5' odds ratio = 1.88, 5–95% confidence intervals [CI] 1.39 to 2.55). Similarly, the T nucleotide at the codon 620 SNP was present in 26 of 208 (12.5%) Addison's disease alleles vs 7.8% of controls (χ2 = 4.63, p = 0.031; odds ratio = 1.69, 5–95% CI 1.04 to 2.73). These data suggest that this LYP polymorphism is a susceptibility allele for Graves' disease with a major effect, and which is likely to have a role in many other autoimmune conditions.

Peptidoglycan (PG) is the main component of bacterial cell walls and the target for many antibiotics. PG biosynthesis is tightly coordinated with cell wall growth and turnover, and many of these control activities depend upon PASTA-domain containing eukaryotic-like serine/threonine protein kinases (PASTA-eSTK) that sense PG fragments. However, only a few PG biosynthetic enzymes are direct kinase substrates. Here, we identify the conserved ReoM protein as a novel PASTA-eSTK substrate in the Gram-positive pathogen Listeria monocytogenes . Our data show that the phosphorylation of ReoM is essential as it controls ClpCP-dependent proteolytic degradation of the essential enzyme MurA, which catalyses the first committed step in PG biosynthesis. We also identify ReoY as a second novel factor required for degradation of ClpCP substrates. Collectively, our data imply that the first committed step of PG biosynthesis is activated through control of ClpCP protease activity in response to signals of PG homeostasis imbalance.