Systemic sclerosis (SSc)-related interstitial lung disease (ILD) has phenotypic similarities to lung involvement in idiopathic interstitial pneumonia (IIP). We aimed to assess whether genetic susceptibility loci recently identified in the large IIP genome-wide association studies (GWASs) were also risk loci for SSc overall or severity of ILD in SSc. A total of 2571 SSc patients and 4500 healthy controls were investigated from the US discovery GWAS and additional US replication cohorts. Thirteen IIP-related selected single nucleotide polymorphisms (SNPs) were genotyped and analyzed for their association with SSc. We found an association of SSc with the SNP rs6793295 in the LRRC34 gene (OR = 1.14, CI 95 % 1.03 to 1.25, p value = 0.009) and rs11191865 in the OBFC1 gene (OR = 1.09, CI 95 % 1.00 to 1.19, p value = 0.043) in the discovery cohort. Additionally, rs7934606 in MUC2 (OR = 1.24, CI 95 % 1.01 to 1.52, p value = 0.037) was associated with SSc-ILD defined by imaging. However, these associations failed to replicate in the validation cohort. Furthermore, SNPs rs2076295 in DSP (β = -2.29, CI 95 % -3.85 to -0.74, p value = 0.004) rs17690703 in SPPL2C (β = 2.04, CI 95 % 0.21 to 3.88, p value = 0.029) and rs1981997 in MAPT (β = 2.26, CI 95 % 0.35 to 4.17, p value = 0.02) were associated with percent predicted forced vital capacity (FVC%) even after adjusting for the anti-topoisomerase (ATA)-positive subset. However, these associations also did not replicate in the validation cohort. Our results add new evidence that SSc and SSc-related ILD are genetically distinct from IIP, although they share phenotypic similarities.

ABSTRACT Common variable immunodeficiency (CVID), the most prevalent symptomatic primary immunodeficiency, is characterized by impaired terminal B-cell differentiation and defective antibody responses. Incomplete genetic penetrance and a wide range of phenotypic expressivity in CVID suggest the participation of additional pathogenic mechanisms. Monozygotic (MZ) twins discordant for CVID are uniquely valuable for studying the contribution of epigenetics to the disease. We used single-cell epigenomics and transcriptomics to create a cell census of naïve-to-memory B cell differentiation in a pair of CVID-discordant MZ twins. Our analysis identifies DNA methylation, chromatin accessibility and transcriptional defects in memory B cells that mirror defective cell-cell communication defects following activation. These findings were validated in a cohort of CVID patients and healthy donors. Our findings provide a comprehensive multi-omics map of alterations in naïve-to-memory B-cell transition in CVID and reveal links between the epigenome and immune cell cross-talk. Our resource, publicly available at the Human Cell Atlas, paves the way for future diagnosis and treatments of CVID patients.