Patients with bladder cancer (BCa) with clinical lymph node (LN) metastasis have an extremely poor prognosis. VEGF-C has been demonstrated to play vital roles in LN metastasis in BCa. However, approximately 20% of BCa with LN metastasis exhibits low VEGF-C expression, suggesting a VEGF-C–independent mechanism for LN metastasis of BCa. Herein, we demonstrate that BCa cell–secreted exosome-mediated lymphangiogenesis promoted LN metastasis in BCa in a VEGF-C–independent manner. We identified an exosomal long noncoding RNA (lncRNA), termed lymph node metastasis-associated transcript 2 (LNMAT2), that stimulated human lymphatic endothelial cell (HLEC) tube formation and migration in vitro and enhanced tumor lymphangiogenesis and LN metastasis in vivo. Mechanistically, LNMAT2 was loaded to BCa cell–secreted exosomes by directly interacting with heterogeneous nuclear ribonucleoprotein A2B1 (hnRNPA2B1). Subsequently, exosomal LNMAT2 was internalized by HLECs and epigenetically upregulated prospero homeobox 1 (PROX1) expression by recruitment of hnRNPA2B1 and increasing the H3K4 trimethylation level in the PROX1 promoter, ultimately resulting in lymphangiogenesis and lymphatic metastasis. Therefore, our findings highlight a VEGF-C–independent mechanism of exosomal lncRNA-mediated LN metastasis and identify LNMAT2 as a therapeutic target for LN metastasis in BCa.

Patients with lymph node (LN) metastatic bladder cancer (BCa) present with extremely poor prognosis. BCa-derived exosomes function as crucial bioactive cargo carriers to mediate the signal transduction in tumor microenvironment triggering tumor metastasis. However, the mechanisms underlying exosome-mediated LN metastasis in BCa are unclear.We conducted the high-throughput sequencing to explore the expression profile of long noncoding RNA (lncRNA) in urinary exosomes (urinary-EXO) from patients with BCa and further evaluated the clinical relevance of exosomal lncRNA BCYRN1 in a larger 210-case cohort. The functional role of exosomal BCYRN1 was evaluated through the migration and tube formation assays in vitro and the footpad-popliteal LN metastasis model in vivo. RNA pull-down assays, luciferase assays, and actinomycin assays were conducted to detect the regulatory mechanism of exosomal BCYRN1.LncRNA BCYRN1 was substantially upregulated in urinary-EXO from patients with BCa, and associated with the LN metastasis of BCa. We demonstrated that exosomal BCYRN1 markedly promoted tube formation and migration of human lymphatic endothelial cells (HLECs) in vitro and lymphangiogenesis and LN metastasis of BCa in vivo. Mechanistically, BCYRN1 epigenetically upregulated WNT5A expression by inducing hnRNPA1-associated H3K4 trimethylation in WNT5A promoter, which activated Wnt/β-catenin signaling to facilitate the secretion of VEGF-C in BCa. Moreover, exosomal BCYRN1 was transmitted to HLECs to stabilize the VEGFR3 mRNA and thus formed an hnRNPA1/WNT5A/VEGFR3 feedforward regulatory loop, ultimately promoting the lymphatic metastasis of BCa. Importantly, blocking VEGFR3 with specific inhibitor, SAR131675 significantly impaired exosomal BCYRN1-induced the LN metastasis in vivo. Clinically, exosomal BCYRN1 was positively associated with the shorter survival of BCa patients and identified as a poor prognostic factor of patients.Our results uncover a novel mechanism by which exosomal BCYRN1 synergistically enhances VEGF-C/VEGFR3 signaling-induced lymphatic metastasis of BCa, indicating that BCYRN1 may serve as an encouraging therapeutic target for patients with BCa.

Intrahepatic cholestasis of pregnancy (ICP) is associated with an increased risk of adverse fetal outcomes, yet its influence on offspring growth remains unclear. Our study dynamically tracks growth rates in children from ICP and healthy mothers and investigates the link between maternal liver function and developmental abnormalities in offspring.