Human MutationVolume 29, Issue 7 p. 959-965 Research Article Parkes Weber syndrome, vein of Galen aneurysmal malformation, and other fast-flow vascular anomalies are caused by RASA1 mutations† Nicole Revencu, Nicole Revencu Laboratory of Human Molecular Genetics, de Duve Institute, Université catholique de Louvain, Brussels, Belgium Center for Human Genetics, Cliniques universitaires St Luc, Université catholique de Louvain, Brussels, BelgiumSearch for more papers by this authorLaurence M. Boon, Laurence M. Boon Laboratory of Human Molecular Genetics, de Duve Institute, Université catholique de Louvain, Brussels, Belgium Vascular Anomalies Centre, Division of Plastic Surgery, Cliniques universitaires St Luc, Brussels, BelgiumSearch for more papers by this authorJohn B. Mulliken, John B. Mulliken Vascular Anomalies Center, Division of Plastic Surgery and Department of Radiology, Children's Hospital, Harvard Medical School, Boston, MassachusettsSearch for more papers by this authorOdile Enjolras, Odile Enjolras Centre Multidisciplinaire des Angiomes de l'enfant, AP-HP, Hôpital d'enfants Armand-Trousseau, Service de Chirurgie Maxillo-Faciale et Chirurgie Plastique, Paris, FranceSearch for more papers by this authorMaria Rosa Cordisco, Maria Rosa Cordisco Department of Pediatric Dermatology, Hospital de Pediatria Dr. J.P. Garrahan, Buenos Aires, ArgentinaSearch for more papers by this authorPatricia E. Burrows, Patricia E. Burrows Vascular Anomalies Center, Division of Plastic Surgery and Department of Radiology, Children's Hospital, Harvard Medical School, Boston, MassachusettsSearch for more papers by this authorPhilippe Clapuyt, Philippe Clapuyt Department of Radiology, Cliniques universitaires Saint-Luc, Université catholique de Louvain, Brussels, BelgiumSearch for more papers by this authorFrank Hammer, Frank Hammer Department of Radiology, Cliniques universitaires Saint-Luc, Université catholique de Louvain, Brussels, BelgiumSearch for more papers by this authorJosée Dubois, Josée Dubois Department of Medical Imaging, Sainte-Justine Mother-Child University Hospital, Montreal, CanadaSearch for more papers by this authorEulalia Baselga, Eulalia Baselga Hospital de la Santa Creu I Sant Pau, Barcelona, SpainSearch for more papers by this authorFrancesco Brancati, Francesco Brancati IRCCS CSS, Mendel Institute, Rome, ItalySearch for more papers by this authorRobin Carder, Robin Carder Southwestern Medical Center, Dallas, TexasSearch for more papers by this authorJosé Miguel Ceballos Quintal, José Miguel Ceballos Quintal Laboratorio de Genética, Universidad Autónoma de Yucatán Mérida, Yucatán, MexicoSearch for more papers by this authorBruno Dallapiccola, Bruno Dallapiccola IRCCS CSS, Mendel Institute, Rome, ItalySearch for more papers by this authorGayle Fischer, Gayle Fischer Royal North Shore Hospital, St Leonards, AustraliaSearch for more papers by this authorIlona J. Frieden, Ilona J. Frieden Departement of Dermatology, School of Medicine, University of California, San Francisco, San Francisco, CaliforniaSearch for more papers by this authorMaria Garzon, Maria Garzon Department of Dermatology, Columbia University, New York, New YorkSearch for more papers by this authorJohn Harper, John Harper Department of Pediatric Dermatology, Great Ormond Street Hospital for Children, London, United KingdomSearch for more papers by this authorJennifer Johnson-Patel, Jennifer Johnson-Patel Robert E. Bush Naval Hospital, Twenty-nine Palms, CaliforniaSearch for more papers by this authorChristine Labrèze, Christine Labrèze Hôpital Pellegrin Enfants, Bordeaux, FranceSearch for more papers by this authorLoreto Martorell, Loreto Martorell Genetica Molecular, Hospital Sant Joan de Déu, Barcelona, SpainSearch for more papers by this authorHarriet J. Paltiel, Harriet J. Paltiel Vascular Anomalies Center, Division of Plastic Surgery and Department of Radiology, Children's Hospital, Harvard Medical School, Boston, MassachusettsSearch for more papers by this authorAnnette Pohl, Annette Pohl Zentrum fur Kinderheilkunde und Jugendmedizin, Freiburg, GermanySearch for more papers by this authorJulie Prendiville, Julie Prendiville Division of Pediatric Dermatology, Department of Pediatrics, University of British Columbia, British Columbia Children's Hospital, Vancouver, CanadaSearch for more papers by this authorIsabelle Quere, Isabelle Quere Centre Hospitalier Universitaire, Montpellier, FranceSearch for more papers by this authorDawn H. Siegel, Dawn H. Siegel Departement of Dermatology, School of Medicine, University of California, San Francisco, San Francisco, CaliforniaSearch for more papers by this authorEnza Maria Valente, Enza Maria Valente IRCCS CSS, Mendel Institute, Rome, ItalySearch for more papers by this authorAnnet Van Hagen, Annet Van Hagen VU Medical Center, Amsterdam, NetherlandsSearch for more papers by this authorLiselot Van Hest, Liselot Van Hest VU Medical Center, Amsterdam, NetherlandsSearch for more papers by this authorKeith K. Vaux, Keith K. Vaux Department of Pediatrics, Division of Dysmorphology and Teratology, University of California, San Diego, San Diego, CaliforniaSearch for more papers by this authorAsuncion Vicente, Asuncion Vicente Department of Dermatology, Hospital Sant Joan de Déu, Barcelona, SpainSearch for more papers by this authorLisa Weibel, Lisa Weibel Department of Pediatric Dermatology, Great Ormond Street Hospital for Children, London, United KingdomSearch for more papers by this authorDavid Chitayat, David Chitayat The Prenatal Diagnosis and Medical Genetics Program, Mount Sinai Hospital, Toronto, Ontario, CanadaSearch for more papers by this authorMiikka Vikkula, Corresponding Author Miikka Vikkula [email protected] Laboratory of Human Molecular Genetics, de Duve Institute, Université catholique de Louvain, Brussels, BelgiumHuman Molecular Genetics (GEHU), de Duve Institute, Université catholique de Louvain, Avenue Hippocrate 74(+5), bp. 75.39, B-1200 Brussels, BelgiumSearch for more papers by this author Nicole Revencu, Nicole Revencu Laboratory of Human Molecular Genetics, de Duve Institute, Université catholique de Louvain, Brussels, Belgium Center for Human Genetics, Cliniques universitaires St Luc, Université catholique de Louvain, Brussels, BelgiumSearch for more papers by this authorLaurence M. Boon, Laurence M. Boon Laboratory of Human Molecular Genetics, de Duve Institute, Université catholique de Louvain, Brussels, Belgium Vascular Anomalies Centre, Division of Plastic Surgery, Cliniques universitaires St Luc, Brussels, BelgiumSearch for more papers by this authorJohn B. Mulliken, John B. Mulliken Vascular Anomalies Center, Division of Plastic Surgery and Department of Radiology, Children's Hospital, Harvard Medical School, Boston, MassachusettsSearch for more papers by this authorOdile Enjolras, Odile Enjolras Centre Multidisciplinaire des Angiomes de l'enfant, AP-HP, Hôpital d'enfants Armand-Trousseau, Service de Chirurgie Maxillo-Faciale et Chirurgie Plastique, Paris, FranceSearch for more papers by this authorMaria Rosa Cordisco, Maria Rosa Cordisco Department of Pediatric Dermatology, Hospital de Pediatria Dr. J.P. Garrahan, Buenos Aires, ArgentinaSearch for more papers by this authorPatricia E. Burrows, Patricia E. Burrows Vascular Anomalies Center, Division of Plastic Surgery and Department of Radiology, Children's Hospital, Harvard Medical School, Boston, MassachusettsSearch for more papers by this authorPhilippe Clapuyt, Philippe Clapuyt Department of Radiology, Cliniques universitaires Saint-Luc, Université catholique de Louvain, Brussels, BelgiumSearch for more papers by this authorFrank Hammer, Frank Hammer Department of Radiology, Cliniques universitaires Saint-Luc, Université catholique de Louvain, Brussels, BelgiumSearch for more papers by this authorJosée Dubois, Josée Dubois Department of Medical Imaging, Sainte-Justine Mother-Child University Hospital, Montreal, CanadaSearch for more papers by this authorEulalia Baselga, Eulalia Baselga Hospital de la Santa Creu I Sant Pau, Barcelona, SpainSearch for more papers by this authorFrancesco Brancati, Francesco Brancati IRCCS CSS, Mendel Institute, Rome, ItalySearch for more papers by this authorRobin Carder, Robin Carder Southwestern Medical Center, Dallas, TexasSearch for more papers by this authorJosé Miguel Ceballos Quintal, José Miguel Ceballos Quintal Laboratorio de Genética, Universidad Autónoma de Yucatán Mérida, Yucatán, MexicoSearch for more papers by this authorBruno Dallapiccola, Bruno Dallapiccola IRCCS CSS, Mendel Institute, Rome, ItalySearch for more papers by this authorGayle Fischer, Gayle Fischer Royal North Shore Hospital, St Leonards, AustraliaSearch for more papers by this authorIlona J. Frieden, Ilona J. Frieden Departement of Dermatology, School of Medicine, University of California, San Francisco, San Francisco, CaliforniaSearch for more papers by this authorMaria Garzon, Maria Garzon Department of Dermatology, Columbia University, New York, New YorkSearch for more papers by this authorJohn Harper, John Harper Department of Pediatric Dermatology, Great Ormond Street Hospital for Children, London, United KingdomSearch for more papers by this authorJennifer Johnson-Patel, Jennifer Johnson-Patel Robert E. Bush Naval Hospital, Twenty-nine Palms, CaliforniaSearch for more papers by this authorChristine Labrèze, Christine Labrèze Hôpital Pellegrin Enfants, Bordeaux, FranceSearch for more papers by this authorLoreto Martorell, Loreto Martorell Genetica Molecular, Hospital Sant Joan de Déu, Barcelona, SpainSearch for more papers by this authorHarriet J. Paltiel, Harriet J. Paltiel Vascular Anomalies Center, Division of Plastic Surgery and Department of Radiology, Children's Hospital, Harvard Medical School, Boston, MassachusettsSearch for more papers by this authorAnnette Pohl, Annette Pohl Zentrum fur Kinderheilkunde und Jugendmedizin, Freiburg, GermanySearch for more papers by this authorJulie Prendiville, Julie Prendiville Division of Pediatric Dermatology, Department of Pediatrics, University of British Columbia, British Columbia Children's Hospital, Vancouver, CanadaSearch for more papers by this authorIsabelle Quere, Isabelle Quere Centre Hospitalier Universitaire, Montpellier, FranceSearch for more papers by this authorDawn H. Siegel, Dawn H. Siegel Departement of Dermatology, School of Medicine, University of California, San Francisco, San Francisco, CaliforniaSearch for more papers by this authorEnza Maria Valente, Enza Maria Valente IRCCS CSS, Mendel Institute, Rome, ItalySearch for more papers by this authorAnnet Van Hagen, Annet Van Hagen VU Medical Center, Amsterdam, NetherlandsSearch for more papers by this authorLiselot Van Hest, Liselot Van Hest VU Medical Center, Amsterdam, NetherlandsSearch for more papers by this authorKeith K. Vaux, Keith K. Vaux Department of Pediatrics, Division of Dysmorphology and Teratology, University of California, San Diego, San Diego, CaliforniaSearch for more papers by this authorAsuncion Vicente, Asuncion Vicente Department of Dermatology, Hospital Sant Joan de Déu, Barcelona, SpainSearch for more papers by this authorLisa Weibel, Lisa Weibel Department of Pediatric Dermatology, Great Ormond Street Hospital for Children, London, United KingdomSearch for more papers by this authorDavid Chitayat, David Chitayat The Prenatal Diagnosis and Medical Genetics Program, Mount Sinai Hospital, Toronto, Ontario, CanadaSearch for more papers by this authorMiikka Vikkula, Corresponding Author Miikka Vikkula [email protected] Laboratory of Human Molecular Genetics, de Duve Institute, Université catholique de Louvain, Brussels, BelgiumHuman Molecular Genetics (GEHU), de Duve Institute, Université catholique de Louvain, Avenue Hippocrate 74(+5), bp. 75.39, B-1200 Brussels, BelgiumSearch for more papers by this author First published: 29 April 2008 https://doi.org/10.1002/humu.20746Citations: 312 † Communicated by Peter Byers AboutPDF ToolsRequest permissionExport citationAdd to favoritesTrack citation ShareShare Give accessShare full text accessShare full-text accessPlease review our Terms and Conditions of Use and check box below to share full-text version of article.I have read and accept the Wiley Online Library Terms and Conditions of UseShareable LinkUse the link below to share a full-text version of this article with your friends and colleagues. Learn more.Copy URL Abstract Capillary malformation-arteriovenous malformation (CM-AVM) is a newly recognized autosomal dominant disorder, caused by mutations in the RASA1 gene in six families. Here we report 42 novel RASA1 mutations and the associated phenotype in 44 families. The penetrance and de novo occurrence were high. All affected individuals presented multifocal capillary malformations (CMs), which represent the hallmark of the disorder. Importantly, one-third had fast-flow vascular lesions. Among them, we observed severe intracranial AVMs, including vein of Galen aneurysmal malformation, which were symptomatic at birth or during infancy, extracranial AVM of the face and extremities, and Parkes Weber syndrome (PKWS), previously considered sporadic and nongenetic. These fast-flow lesions can be differed from the other two genetic AVMs seen in hereditary hemorrhagic telangiectasia (HHT) and in phosphatase and tensin homolog (PTEN) hamartomatous tumor syndrome. Finally, some CM-AVM patients had neural tumors reminiscent of neurofibromatosis type 1 or 2. This is the first extensive study on the phenotypes associated with RASA1 mutations, and unravels their wide heterogeneity. Hum Mutat 29(7), 959–965, 2008. © 2008 Wiley-Liss, Inc. REFERENCES Abdalla SA, Letarte M. 2006. Hereditary haemorrhagic telangiectasia: current views on genetics and mechanisms of disease. J Med Genet 43: 97– 110. Bos JL. 1989. Ras oncogenes in human cancer: a review. Cancer Res 49: 4682– 4689. Brancati F, Valente EM, Tadini G, Caputo V, Di Benedetto A, Gelmetti C, Dallapiccola B. 2003. Autosomal dominant hereditary benign telangiectasia maps to the CMC1 locus for capillary malformation on chromosome 5q14. J Med Genet 40: 849– 853. Brouillard P, Boon LM, Mulliken JB, Enjolras O, Ghassibe M, Warman ML, Tan OT, Olsen BR, Vikkula M. 2002. Mutations in a novel factor, glomulin, are responsible for glomuvenous malformations (“glomangiomas”). Am J Hum Genet 70: 866– 874. Ceballos-Quintal JM, Pinto-Escalante D, Castillo-Zapata I. 1996. A new case of Klippel-Trenaunay-Weber (KTW) syndrome: evidence of autosomal dominant inheritance. Am J Med Genet 63: 426– 427. Eerola I, Boon LM, Watanabe S, Grynberg H, Mulliken JB, Vikkula M. 2002. Locus for susceptibility for familial capillary malformation (‘port-wine stain’) maps to 5q. Eur J Hum Genet 10: 375– 380. Eerola I, Boon LM, Mulliken JB, Burrows PE, Dompmartin A, Watanabe S, Vanwijck R, Vikkula M. 2003. Capillary malformation-arteriovenous malformation, a new clinical and genetic disorder caused by RASA1 mutations. Am J Hum Genet 73: 1240– 1249. Friedman E, Gejman PV, Martin GA, McCormick F. 1993. Nonsense mutations in the C-terminal SH2 region of the GTPase activating protein (GAP) gene in human tumours. Nat Genet 5: 242– 247. Gault J, Shenkar R, Recksiek P, Awad IA. 2005. Biallelic somatic and germ line CCM1 truncating mutations in a cerebral cavernous malformation lesion. Stroke 36: 872– 874. Happle R. 1987. Lethal genes surviving by mosaicism: a possible explanation for sporadic birth defects involving the skin. J Am Acad Dermatol 16: 899– 906. Henkemeyer M, Rossi DJ, Holmyard DP, Puri MC, Mbamalu G, Harpal K, Shih TS, Jacks T, Pawson T. 1995. Vascular system defects and neuronal apoptosis in mice lacking ras GTPase-activating protein. Nature 377: 695– 701. Kolanczyk M, Kossler N, Kuhnisch J, Lavitas L, Stricker S, Wilkening U, Manjubala I, Fratzl P, Sporle R, Herrmann BG, Parada LF, Kornak U, Mundlos S. 2007. Multiple roles for neurofibromin in skeletal development and growth. Hum Mol Genet 16: 874– 886. Kulkarni SV, Gish G, van der Geer P, Henkemeyer M, Pawson T. 2000. Role of p120 Ras-GAP in directed cell movement. J Cell Biol 149: 457– 470. Morgan T, McDonald J, Anderson C, Ismail M, Miller F, Mao R, Madan A, Barnes P, Hudgins L, Manning M. 2002. Intracranial hemorrhage in infants and children with hereditary hemorrhagic telangiectasia (Osler-Weber-Rendu syndrome). Pediatrics 109: E12. Mulliken JB, Young AE. 1988. Vascular birthmarks: hemangiomas and malformations. Philadelphia: W.B. Saunders. p 264– 265. Parkes Weber F. 1918. Hemangiectatic hypertrophy of limbs-congenital phlebarteriectasis and so-called congenital varicose veins. Brit J Child Dis 15: 13– 17. Parkinson D. 1999. AVMs and neurofibromatosis. Surg Neurol 52: 325– 326. Robertson D. 1957. Congenital arteriovenous fistulae of the extremities. Postgrad Med J 32: 7– 13. Rodriguez-Jadraque R, Martinez-Salio A, Garcia de Alvaro MT, Porta-Etessam J, Torres-Mohedas J, Mateos-Beato F. 2000. [Arteriovenous malformation in neurofibromatosis type 1. A case report and review of the literature]. Rev Neurol 31: 1043– 1045. Suh DC, Alvarez H, Bhattacharya JJ, Rodesch G, Lasjaunias PL. 2001. Intracranial haemorrhage within the first two years of life. Acta Neurochir (Wien) 143: 997– 1004. Tan WH, Baris HN, Burrows PE, Robson CD, Alomari AI, Mulliken JB, Fishman SJ, Irons MB. 2007. The spectrum of vascular anomalies in patients with PTEN mutations: implications for diagnosis and management. J Med Genet 44: 594– 602. Tos M, Stangerup SE, Caye-Thomasen P, Tos T, Thomsen J. 2004. What is the real incidence of vestibular schwannoma? Arch Otolaryngol Head Neck Surg 130: 216– 220. Westacott S, Mohan D, Norman PF, Strachan WE, Paxton RM. 1988. MRI diagnosis of vertebral arteriovenous malformations in neurofibromatosis. Br J Neurosurg 2: 385– 389. Wu M, Wallace MR, Muir D. 2006. Nf1 haploinsufficiency augments angiogenesis. Oncogene 25: 2297– 2303. Yue Y, Lypowy J, Hedhli N, Abdellatif M. 2004. Ras GTPase-activating protein binds to Akt and is required for its activation. J Biol Chem 279: 12883– 12889. Zhou XP, Marsh DJ, Hampel H, Mulliken JB, Gimm O, Eng C. 2000. Germline and germline mosaic PTEN mutations associated with a Proteus-like syndrome of hemihypertrophy, lower limb asymmetry, arteriovenous malformations and lipomatosis. Hum Mol Genet 9: 765– 768. Citing Literature Volume29, Issue7July 2008Pages 959-965 ReferencesRelatedInformation

Most arteriovenous malformations (AVMs) are localized and occur sporadically. However, they also can be multifocal in autosomal-dominant disorders, such as hereditary hemorrhagic telangiectasia and capillary malformation (CM)-AVM. Previously, we identified RASA1 mutations in 50% of patients with CM-AVM. Herein we studied non-RASA1 patients to further elucidate the pathogenicity of CMs and AVMs.We conducted a genome-wide linkage study on a CM-AVM family. Whole-exome sequencing was also performed on 9 unrelated CM-AVM families. We identified a candidate gene and screened it in a large series of patients. The influence of several missense variants on protein function was also studied in vitro.We found evidence for linkage in 2 loci. Whole-exome sequencing data unraveled 4 distinct damaging variants in EPHB4 in 5 families that cosegregated with CM-AVM. Overall, screening of EPHB4 detected 47 distinct mutations in 54 index patients: 27 led to a premature stop codon or splice-site alteration, suggesting loss of function. The other 20 are nonsynonymous variants that result in amino acid substitutions. In vitro expression of several mutations confirmed loss of function of EPHB4. The clinical features included multifocal CMs, telangiectasias, and AVMs.We found EPHB4 mutations in patients with multifocal CMs associated with AVMs. The phenotype, CM-AVM2, mimics RASA1-related CM-AVM1 and also hereditary hemorrhagic telangiectasia. RASA1-encoded p120RASGAP is a direct effector of EPHB4. Our data highlight the pathogenetic importance of this interaction and indicts EPHB4-RAS-ERK signaling pathway as a major cause for AVMs.

Integrin α(3) is a transmembrane integrin receptor subunit that mediates signals between the cells and their microenvironment. We identified three patients with homozygous mutations in the integrin α(3) gene that were associated with disrupted basement-membrane structures and compromised barrier functions in kidney, lung, and skin. The patients had a multiorgan disorder that included congenital nephrotic syndrome, interstitial lung disease, and epidermolysis bullosa. The renal and respiratory features predominated, and the lung involvement accounted for the lethal course of the disease. Although skin fragility was mild, it provided clues to the diagnosis.

Importance Uncombable hair syndrome (UHS) is a rare hair shaft anomaly that manifests during infancy and is characterized by dry, frizzy, and wiry hair that cannot be combed flat. Only about 100 known cases have been reported so far. Objective To elucidate the genetic spectrum of UHS. Design, Setting, and Participants This cohort study includes 107 unrelated index patients with a suspected diagnosis of UHS and family members who were recruited worldwide from January 2013 to December 2021. Participants of all ages, races, and ethnicities were recruited at referral centers or were enrolled on their own initiative following personal contact with the authors. Genetic analyses were conducted in Germany from January 2014 to December 2021. Main Outcomes and Measures Clinical photographs, Sanger or whole-exome sequencing and array-based genotyping of DNA extracted from blood or saliva samples, and 3-dimensional protein modeling. Descriptive statistics, such as frequency counts, were used to describe the distribution of identified pathogenic variants and genotypes. Results The genetic characteristics of patients with UHS were established in 80 of 107 (74.8%) index patients (82 [76.6%] female) who carried biallelic pathogenic variants in PADI3 , TGM3 , or TCHH (ie, genes that encode functionally related hair shaft proteins). Molecular genetic findings from 11 of these 80 individuals were previously published. In 76 (71.0%) individuals, the UHS phenotype were associated with pathogenic variants in PADI3 . The 2 most commonly observed PADI3 variants account for 73 (48.0%) and 57 (37.5%) of the 152 variant PADI3 alleles in total, respectively. Two individuals carried pathogenic variants in TGM3 , and 2 others carried pathogenic variants in TCHH . Haplotype analyses suggested a founder effect for the 4 most commonly observed pathogenic variants in the PADI3 gene. Conclusions and Relevance This cohort study extends and gives an overview of the genetic variant spectrum of UHS based on molecular genetic analyses of the largest worldwide collective of affected individuals, to our knowledge. Formerly, a diagnosis of UHS could only be made by physical examination of the patient and confirmed by microscopical examination of the hair shaft. The discovery of pathogenic variants in PADI3 , TCHH , and TGM3 may open a new avenue for clinicians and affected individuals by introducing molecular diagnostics for UHS.

Abstract Background Tinea capitis (TC) is the most frequent dermatophyte infection in children requiring systemic and topical treatment for several weeks. Traditionally, diagnosis and treatment monitoring were based on microscopic examination and fungal culture of scales and plucked hairs, which both have significant limitations. Objectives To investigate the role of dermatophyte polymerase chain reaction (PCR) in the treatment of TC. Methods Scales and plucked hairs of children with TC were investigated by dermatophyte PCR, microscopic examination and fungal culture at baseline and during antifungal treatment. Results Seventeen children with TC were included. At baseline, sensitivity of PCR was 100% as compared to 60% and 87% for direct microscopy and fungal culture, respectively. Species identification by PCR and fungal culture was consistent in all cases. During follow‐up, analysis of 38 samples under treatment showed a sensitivity of PCR, direct microscopy and fungal culture of 68%, 26% and 89% while specificity was 84%, 100% and 100%, respectively. PCR during therapy proved to be false‐negative in six and false‐positive in three instances. The latter turned negative after 4 weeks without further systemic treatment. Conclusions Dermatophyte PCR is an excellent tool for baseline diagnostics of TC providing rapid and accurate results. Our findings suggest that due to the fast and reliable results, it may replace direct microscopy and fungal culture to confirm or exclude TC in children. In the treatment course, diagnostic accuracy and performance of PCR seem reduced as compared to fungal culture, limiting its value for treatment monitoring. Mycological cure ascertained by fungal culture should currently remain the therapeutic goal.

Keiner.

Phototoxicity and skin cancer are severe adverse effects of the anti-fungal drug Voriconazole (VOR). These adverse effects resemble those seen in xeroderma pigmentosum (XP), caused by defective DNA nucleotide excision repair (NER), and we show that VOR decreases NER capacity. We show that VOR treatment does not perturb the expression of NER, or other DNA damage-related genes, but that VOR localizes to heterochromatin, in complexes containing histone acetyltransferase GCN5. Impairment of GCN5 binding to histone H3 reduced acetylation of H3, restricting damage-dependent chromatin unfolding, thereby reducing NER initiation. Restoration of H3 histone acetylation using histone deacetylase inhibitors (HDACi), rescued VOR-induced NER repression, thus offering a preventive therapeutic option. These findings underline the importance of DNA damage-dependent chromatin remodeling as an important prerequisite of functional DNA repair.