Air sampling was done inside adult and children's hospitals that were selected to treat severe cases of COVID-19. Influence of peripheral factors such as particle concentration, air velocity, sampling point dimensions, distance from the patient bed, sampling time, the flow rate of sampling pump, and factors related to COVID-19 patients (disease period, mask use, number, and age) were analyzed using multivariate analysis (RT-PCR). The results showed that 5.8% (N=8) of indoor air samples were positive for the presence of the coronavirus. The presence of viruses in the indoor air of hospitals has a strong positive relationship with particles and the age of patients while it has a reverse relationship with the air cleaner, ventilation system, and distance from the patients. Therefore, the higher particle concentration, the age of hospitalized patients, and the remarkable number of patients increase the probability of the presence and identification of the coronavirus in the indoor air of hospital wards. Also, the presence of an air cleaner, a suitable ventilation system especially a mechanical one, and increasing the distance from the patients reduces the possibility of virus existence in the indoor air and its identification. In general, the results showed that the adult hospital has more polluted indoor air than the children's hospital in terms of the presence of SARS-COV-2. Sanitation and engineering measures like upgrading the ventilation system, particularly in vulnerable wards of hospitals are recommended.

Tannic acid (TA) is a potent antitumor agent, but its low bioavailability and absorption limit its use. In this study, it was loaded into chitosan-based nanoparticles (Chi-NPs) to overcome these limitations and to improve its antimicrobial and anticancer activities. TA-loaded Chi-NPs (Chi-TA-NPs) were synthesized using the ionic gelation method and physicochemically characterized by FE-SEM, FTIR, XRD, PDI, DLS, and zeta potential analysis. Additionally, the antimicrobial activity of Chi-TA-NPs against two G+ bacterial strains, two G− bacterial strains, and a fungal strain (Candida albicans) was investigated using the microbroth dilution method. MTT assay was used to examine the cytotoxic effects of Chi-TA-NPs on HepG2 cells. The expression of DNA methyltransferase 1 (DNMT1), DNMT3A, and DNMT3B was examined in HepG2 cells using RT-qPCR. The amount of 5-methylcytosine in the HepG2 cell-derived genomic DNA was measured using ELISA. FE-SEM micrographs showed the loading of TA into the chitosan-based formulation. The peaks detected in the XRD and FTIR analyses confirmed the formation of the Chi-TA-NPs. The PDI value (0.247 ± 0.03), size (567.0 ± 25.84 nm), and zeta potential (17.0 ± 5.86 mV) confirmed the relative stability of Chi-TA-NPs. A constant release profile in line with the Korsmeyer-Peppas model was detected for Chi-TA-NPs, such that approximately 44% of TA was released after 300 min. In addition, Chi-TA-NPs exhibited effective antimicrobial activity against the studied microbial strains, as manifested by MIC values ranging from 250 to 1000 µg/mL. Chi-TA-NPs induced cytotoxicity in liver tumor cell line, with an IC50 value of 500 µg/mL. Furthermore, Chi-TA-NPs considerably decreased the expression of DNMT1 (2.52-fold; p = 0.01), DNMT3A (2.96-fold; p = 0.004), and DNMT3B (2.94-fold; p < 0.0001). However, 5-methylcytosine levels in HepG2 cells were unaffected by Chi-TA-NPs treatment (p = 0.62). Finally, the antimicrobial, cytotoxic, and epigenetic effects of Chi-TA-NPs were more pronounced than those of free TA and the unloaded Chi-NPs. In conclusion, Chi-TA-NPs exhibit promising potential for reducing microbial growth and promoting cytotoxicity in liver cancer cells.