The coding region of the bacterial chloramphenicol acetyltransferase (CAT) gene is widely used as an indicator gene in gene transfer experiments dealing with regulation of transcription in eukaryotes.Chimaeric CAT fusion genes are especially useful because no endogenous CAT activity is present in eukaryotic cells and because CAT enzyme activity can be monitored by a rapid and sensitive assay (1).In order to simplify the construction of hybrid CAT genes, we have constructed the plasmids pBLCAT2 and pBLCAT3.The coding region of the CAT gene as well as the small t intron and polyadenylation signals from SV40 were inserted into the polylinker region of the high copy number plasmid pUC18 (2).Unique BgHI and Xhol restriction sites were introduced upstream of the CAT coding region by insertion of synthetic linkers.A BamHI site at the 3' end of the transcription unit was converted into a dam methylation sensitive Clal site by partial digestion with BamHI, filling -in and re -ligation.In the promoterless construction pBLCAT3 eight unique restriction sites are suitable for insertion of different eukaryotic promoters at the 5' end of the CAT gene.Four additional unique restriction sites make the insertion of regulatory signals 3' of the CAT gene possible and enable the excision of the intact fusion gene from the prokaryotic vector.The presence of die Herpes simplex virus tk promoter in pBLCAT2 permits die analysis of the effects of putative regulatory elements on a heterologous eukaryotic promoter.A BamHI/Bglll fragment from the HSV tk linker scanning mutant LS -115/ -105 (3) spanning the promoter from -105 to +51 was inserted into the corresponding restriction sites of pBLCAT3 thereby generating pBLCAT2.The modified polylinker regions at the 5' and the 3' ends have been sequenced and compiled sequences for both plasmids are available on request.

Abstract The chemokine receptors CCR2 and CCR5 play important roles in the recruitment of monocytes/macrophages and T cells. To better understand the role of both receptors in murine models of inflammatory diseases and to recognize potential problems when correlating these data to humans, we have generated mAbs against murine CCR2 and CCR5. In mice CCR2 is homogeneously expressed on monocytes and on 2–15% of T cells, closely resembling the expression pattern in humans. In contrast to humans, murine NK cells are highly CCR5 positive. In addition, CCR5 is expressed on 3–10% of CD4 and 10–40% of CD8-positive T cells and is weakly detectable on monocytes. Using a model of immune complex nephritis, we examined the effects of inflammation on chemokine receptor expression and found a 10-fold enrichment of CCR5+ and CCR2+ T cells in the inflamed kidneys. The activity of various chemokines and the antagonistic properties of the mAbs were measured by ligand-induced internalization of CCR2 and CCR5 on primary leukocytes. The Ab MC-21 (anti-CCR2) reduced the activity of murine monocyte chemotactic protein 1 by 95%, whereas the Ab MC-68 (anti-CCR5) blocked over 99% of the macrophage-inflammatory protein 1α and RANTES activity. MC-21 and MC-68 efficiently blocked the ligand binding to CCR2 and CCR5 with an IC50 of 0.09 and 0.6–1.0 μg/ml, respectively. In good correlation to these in vitro data, MC-21 almost completely prevented the influx of monocytes in thioglycollate-induced peritonitis. Therefore, both Abs appear as useful reagents to further study the role of CCR2 and CCR5 in murine disease models.

CCR5, a chemokine receptor expressed on T cells and macrophages, is the principal coreceptor for M-tropic HIV-1 strains. Recently, we described an NH2-terminal modification of the CCR5 ligand regulated on activation, normal T cell expressed and secreted (RANTES), aminooxypentane-RANTES (AOP-RANTES), that showed potent inhibition of macrophage infection by HIV-1 under conditions where RANTES was barely effective. To investigate the mechanism of AOP-RANTES inhibition of HIV infectivity we examined the surface expression of CCR5 using a monoclonal anti-CCR5 antibody, MC-1. We demonstrate that AOP-RANTES rapidly caused >90% decrease in cell surface expression of CCR5 on lymphocytes, monocytes/ macrophages, and CCR5 transfected Chinese hamster ovary (CHO) cells. RANTES also caused a loss of cell surface CCR5, although its effect was less than with AOP-RANTES. Significantly, AOP-RANTES inhibited recycling of internalized CCR5 to the cell surface, whereas RANTES did not. When peripheral blood mononuclear cells are cultured for prolonged periods of time in the presence of RANTES, CCR5 expression is comparable to that seen on cells treated with control medium, whereas there is no CCR5 surface expression on cells cultured in the presence of AOP-RANTES. Immunofluorescence indicated that both AOP-RANTES and RANTES induced downmodulation of cell surface CCR5, and that the receptor was redistributed into endocytic organelles containing the transferrin receptor. When RANTES was removed, the internalized receptor was recycled to the cell surface; however, the receptor internalized in the presence of AOP-RANTES was retained in endosomes. Using human osteosarcoma (GHOST) 34/CCR5 cells, the potency of AOP-RANTES and RANTES to inhibit infection by the M-tropic HIV-1 strain, SF 162, correlated with the degree of downregulation of CCR5 induced by the two chemokines. These differences between AOP-RANTES and RANTES in their effect on receptor downregulation and recycling suggest a mechanism for the potent inhibition of HIV infection by AOP-RANTES. Moreover, these results support the notion that receptor internalization and inhibition of receptor recycling present new targets for therapeutic agents to prevent HIV infection.

Reporter plasmids utilizing the cat gene for the analysis of promoter and enhancer sequences in vertebrate cells, were constructed. These plasmids minimize the background of transcription derived from cryptic promoters or cryptic regulatory elements within the vector.