The activation of nuclear factor kappa B (NF-kappa B) has been implicated in the regulation of transcription of a variety of genes and has been shown to be essential for the expression of genes controlled by the long terminal repeat of human immunodeficiency virus (HIV LTR). We show here that intracellular thiol levels play a key role in regulating this process. That is, stimulation with tumor necrosis factor alpha and/or phorbol 12-myristate 13-acetate activates NF-kappa B and markedly decreases intracellular thiols; N-acetyl-L-cysteine, an efficient thiol source, prevents this thiol decrease and blocks the activation of NF-kappa B; and the lack of activated NF-kappa B prevents the activation of the HIV LTR and the transcription of genes under its control. These findings reveal a previously unrecognized genetic regulatory mechanism in which cytokine-induced shifts in intracellular thiol levels are crucial in the control of NF-kappa B activity and thereby influence the spectrum of genes expressed by cytokine-stimulated cells.

The ROSAβgeo26 (ROSA26) mouse strain was produced by random retroviral gene trapping in embryonic stem cells. Staining of ROSA26 tissues and fluorescence-activated cell sorter-Gal analysis of hematopoietic cells demonstrates ubiquitous expression of the proviral βgeo reporter gene, and bone marrow transfer experiments illustrate the general utility of this strain for chimera and transplantation studies. The gene trap vector has integrated into a region that produces three transcripts. Two transcripts, lost in ROSA26 homozygous animals, originate from a common promoter and share identical 5′ ends, but neither contains a significant ORF. The third transcript, originating from the reverse strand, shares antisense sequences with one of the noncoding transcripts. This third transcript potentially encodes a novel protein of at least 505 amino acids that is conserved in humans and in Caenorhabditis elegans .

An instrument has been developed for sorting biological cells. The cells are rendered differentially fluorescent and incorporated into a small liquid stream illuminated by a laser beam. The cells pass sequentially through the beam, and fluorescent light from the cells gives rise to electrical signals. The stream is broken into a series of uniform size drops downstream of the laser. The cell signals are used to give appropriate electrostatic charges to drops containing the cells. The drops then pass between two charged plates and are deflected to appropriate containers. The system has proved capable of providing fractions containing large numbers of viable cells highly enriched in a particular functional type.

Mutations in the Bruton's tyrosine kinase (Btk) gene have been linked to severe early B cell developmental blocks in human X-linked agammaglobulinemia (XLA), and to milder B cell activation deficiencies in murine X-linked immune deficiency (Xid). To elucidate unequivocally potential Btk functions in mice, we generated mutations in embryonic stem cells, which eliminated the ability to encode Btk pleckstrin homology or kinase domains, and assayed their effects by RAG2-deficient blastocyst complementation or introduction into the germline. Both mutations block expression of Btk protein and lead to reduced numbers of mature conventional B cells, severe B1 cell deficiency, serum IgM and IgG3 deficiency, and defective responses in vitro to various B cell activators and in vivo to immunization with thymus-independent type II antigens. These results prove that lack of Btk function results in an Xid phenotype and further suggest a differential requirement for Btk during the early stages of murine versus human B lymphocyte development.

Glutathione (GSH), a cysteine-containing tripeptide, is essential for the viability and function of virtually all cells. In vitro studies showing that low GSH levels both promote HIV expression and impair T cell function suggested a link between GSH depletion and HIV disease progression. Clinical studies presented here directly demonstrate that low GSH levels predict poor survival in otherwise indistinguishable HIV-infected subjects. Specifically, we show that GSH deficiency in CD4 T cells from such subjects is associated with markedly decreased survival 2–3 years after baseline data collection (Kaplan–Meier and logistic regression analyses, P < 0.0001 for both analyses). This finding, supported by evidence demonstrating that oral administration of the GSH prodrug N -acetylcysteine replenishes GSH in these subjects and suggesting that N -acetylcysteine administration can improve their survival, establishes GSH deficiency as a key determinant of survival in HIV disease. Further, it argues strongly that the unnecessary or excessive use of acetaminophen, alcohol, or other drugs known to deplete GSH should be avoided by HIV-infected individuals.

Immunological ReviewsVolume 93, Issue 1 p. 81-102 The LY-1B Cell Lineage Leonore A. Herzenberg, Leonore A. Herzenberg Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this authorAlan M. Stall, Alan M. Stall Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this authorPaul A. Lalor, Paul A. Lalor Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this authorCharles Sidman, Charles Sidman The Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME 04609, U.S.A.Search for more papers by this authorWayne A. Moore, Wayne A. Moore Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this authorDavid R. Parks, David R. Parks Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this authorLeonard A. Herzenberg, Leonard A. Herzenberg Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this author Leonore A. Herzenberg, Leonore A. Herzenberg Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this authorAlan M. Stall, Alan M. Stall Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this authorPaul A. Lalor, Paul A. Lalor Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this authorCharles Sidman, Charles Sidman The Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME 04609, U.S.A.Search for more papers by this authorWayne A. Moore, Wayne A. Moore Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this authorDavid R. Parks, David R. Parks Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this authorLeonard A. Herzenberg, Leonard A. Herzenberg Department of Genetics, Stanford University, Stanford. CA 94305, U.S.A.Search for more papers by this author First published: October 1986 https://doi.org/10.1111/j.1600-065X.1986.tb01503.xCitations: 470AboutPDF ToolsRequest permissionExport citationAdd to favoritesTrack citation ShareShare Give accessShare full text accessShare full-text accessPlease review our Terms and Conditions of Use and check box below to share full-text version of article.I have read and accept the Wiley Online Library Terms and Conditions of UseShareable LinkUse the link below to share a full-text version of this article with your friends and colleagues. Learn more.Copy URL Share a linkShare onFacebookTwitterLinked InRedditWechat Citing Literature Volume93, Issue1October 1986Pages 81-102 RelatedInformation

The peritoneal cavity (PerC) is a unique compartment within which a variety of immune cells reside, and from which macrophages (MØ) are commonly drawn for functional studies. Here we define two MØ subsets that coexist in PerC in adult mice. One, provisionally called the large peritoneal MØ (LPM), contains approximately 90% of the PerC MØ in unstimulated animals but disappears rapidly from PerC following lipopolysaccharide (LPS) or thioglycolate stimulation. These cells express high levels of the canonical MØ surface markers, CD11b and F4/80. The second subset, referred to as small peritoneal MØ (SPM), expresses substantially lower levels of CD11b and F4/80 but expresses high levels of MHC-II, which is not expressed on LPM. SPM, which predominates in PerC after LPS or thioglycolate stimulation, does not derive from LPM. Instead, it derives from blood monocytes that rapidly enter the PerC after stimulation and differentiate to mature SPM within 2 to 4 d. Both subsets show clear phagocytic activity and both produce nitric oxide (NO) in response to LPS stimulation in vivo. However, their responses to LPS show key differences: in vitro, LPS stimulates LPM, but not SPM, to produce NO; in vivo, LPS stimulates both subsets to produce NO, albeit with different response patterns. These findings extend current models of MØ heterogeneity and shed new light on PerC MØ diversity, development, and function. Thus, they introduce a new context for interpreting (and reinterpreting) data from ex vivo studies with PerC MØ.

The Fluorescence Activated Cell Sorter (FACS) was invented in the late 1960s by Bonner, Sweet, Hulett, Herzenberg, and others to do flow cytometry and cell sorting of viable cells. Becton Dickinson Immunocytometry Systems introduced the commercial machines in the early 1970s, using the Stanford patent and expertise supplied by the Herzenberg Laboratory and a Becton Dickinson engineering group under Bernie Shoor. Over the years, we have increased the number of measured FACS dimensions (parameters) and the speed of sorting to where we now simultaneously measure 12 fluorescent colors plus 2 scatter parameters. In this history, I illustrate the great utility of this state-of-the-art instrument, which allows us to simultaneously stain, analyze, and then sort cells from small samples of human blood cells from AIDS patients, infants, stem cell transplant patients, and others. I also illustrate analysis and sorting of multiple subpopulations of lymphocytes by use of 8-12 colors. In addition, I review single cell sorting used to clone and analyze hybridomas and discuss other applications of FACS developed over the past 30 years, as well as give our ideas on the future of FACS. These ideas are currently being implemented in new programs using the internet for data storage and analysis as well as developing new fluorochromes, e.g., green fluorescent protein and tandem dyes, with applications in such areas as apoptosis, gene expression, cytokine expression, cell biochemistry, redox regulation, and AIDS. Finally, I describe new FACS methods for measuring activated kinases and phosphatases and redox active enzymes in individual cells simultaneously with cell surface phenotyping. Thus, key functions can be studied in various subsets of cells without the need for prior sorting.