Itraconazole (ITZ) is a well-known antifungal agent that also has anticancer activity. In this study, we identify ITZ as a broad-spectrum inhibitor of enteroviruses (e.g., poliovirus, coxsackievirus, enterovirus-71, rhinovirus). We demonstrate that ITZ inhibits viral RNA replication by targeting oxysterol-binding protein (OSBP) and OSBP-related protein 4 (ORP4). Consistently, OSW-1, a specific OSBP/ORP4 antagonist, also inhibits enterovirus replication. Knockdown of OSBP inhibits virus replication, whereas overexpression of OSBP or ORP4 counteracts the antiviral effects of ITZ and OSW-1. ITZ binds OSBP and inhibits its function, i.e., shuttling of cholesterol and phosphatidylinositol-4-phosphate between membranes, thereby likely perturbing the virus-induced membrane alterations essential for viral replication organelle formation. ITZ also inhibits hepatitis C virus replication, which also relies on OSBP. Together, these data implicate OSBP/ORP4 as molecular targets of ITZ and point to an essential role of OSBP/ORP4-mediated lipid exchange in virus replication that can be targeted by antiviral drugs.

The picornavirus genome encodes a large, single polyprotein that is processed by viral proteases to form an active replication complex. The replication complex is formed with the viral genome, host proteins, and viral proteins that are produced/translated directly from each of the viral genomes (viral proteins provided in

Abstract Background Although polioviruses (PVs) replicate in lymphoid tissue of both the pharynx and ileum, research on polio vaccine–induced mucosal immunity has predominantly focused on intestinal neutralizing and binding antibody levels measured in stool. Methods To investigate the extent to which routine immunization with intramuscularly injected inactivated polio vaccine (IPV) may induce nasal and pharyngeal mucosal immunity, we measured PV type-specific neutralization and immunoglobulin (Ig) G, IgA, and IgM levels in nasal secretions, adenoid cell supernatants, and sera collected from 12 children, aged 2–5 years, undergoing planned adenoidectomies. All participants were routinely immunized with IPV and had no known contact with live PVs. Results PV-specific mucosal neutralization was detected in nasal and adenoid samples, mostly from children who had previously received 4 IPV doses. Across the 3 PV serotypes, both nasal (Spearman ρ ≥ 0.87, P ≤ .0003 for all) and adenoid (Spearman ρ ≥ 0.57, P ≤ .05 for all) neutralization titers correlated with serum neutralization titers. In this small study sample, there was insufficient evidence to determine which Ig isotype(s) was correlated with neutralization. Conclusions Our findings provide policy-relevant evidence that routine immunization with IPV may induce nasal and pharyngeal mucosal immunity. The observed correlations of nasal and pharyngeal mucosal neutralization with serum neutralization contrast with previous observations of distinct intestinal and serum responses to PV vaccines. Further research is warranted to determine which antibody isotype(s) correlate with polio vaccine–induced nasal and pharyngeal mucosal neutralizing activity and to understand the differences from intestinal mucosal immunity.