Macrophages are key regulators of liver fibrosis progression and regression in nonalcoholic steatohepatitis (NASH). Liver macrophages comprise resident phagocytes, Kupffer cells, and monocyte‐derived cells, which are recruited through the chemokine receptor C‐C motif chemokine receptor 2 (CCR2). We aimed at elucidating the therapeutic effects of inhibiting monocyte infiltration in NASH models by using cenicriviroc (CVC), an oral dual chemokine receptor CCR2/CCR5 antagonist that is under clinical evaluation. Human liver tissues from NASH patients were analyzed for CCR2 + macrophages, and administration of CVC was tested in mouse models of steatohepatitis, liver fibrosis progression, and fibrosis regression. In human livers from 17 patients and 4 controls, CCR2 + macrophages increased parallel to NASH severity and fibrosis stage, with a concomitant inflammatory polarization of these cluster of differentiation 68 + , portal monocyte‐derived macrophages (MoMF). Similar to human disease, we observed a massive increase of hepatic MoMF in experimental models of steatohepatitis and liver fibrosis. Therapeutic treatment with CVC significantly reduced the recruitment of hepatic Ly‐6C + MoMF in all models. In experimental steatohepatitis with obesity, therapeutic CVC application significantly improved insulin resistance and hepatic triglyceride levels. In fibrotic steatohepatitis, CVC treatment ameliorated histological NASH activity and hepatic fibrosis. CVC inhibited the infiltration of Ly‐6C + monocytes, without direct effects on macrophage polarization, hepatocyte fatty acid metabolism, or stellate cell activation. Importantly, CVC did not delay fibrosis resolution after injury cessation. RNA sequencing analysis revealed that MoMF, but not Kupffer cells, specifically up‐regulate multiple growth factors and cytokines associated with fibrosis progression, while Kupffer cells activated pathways related to inflammation initiation and lipid metabolism. Conclusion : Pharmacological inhibition of CCR2 + monocyte recruitment efficiently ameliorates insulin resistance, hepatic inflammation, and fibrosis, corroborating the therapeutic potential of CVC in patients with NASH. (H epatology 2018;67:1270‐1283)

Acetaminophen (APAP, paracetamol) poisoning is a leading cause of acute liver failure (ALF) in humans and induces hepatocyte necrosis, followed by activation of the innate immune system, further aggravating liver injury. The role of infiltrating monocytes during the early phase of ALF is still ambiguous. Upon experimental APAP overdose in mice, monocyte-derived macrophages (MoMFs) massively accumulated in injured liver within 12-24 hours, whereas the number of tissue-resident macrophages (Kupffer cells) decreased. Influx of MoMFs is dependent on the chemokine receptor, chemokine (C-C motif) receptor 2 (CCR2), given that Ccr2-/- mice display reduced infiltration of monocytes and attenuated liver injury post-APAP overdose at early time points. As evidenced by intravital multiphoton microscopy of Ccr2 reporter mice, CCR2+ monocytes infiltrate liver as early as 8-12 hours post-APAP overdose and form dense cellular clusters around necrotic areas. CCR2+ MoMFs express a distinct pattern of inflammatory, but also repair-associated, genes in injured livers. Adoptive transfer experiments revealed that MoMFs primarily exert proinflammatory functions early post-APAP, thereby aggravating liver injury. Consequently, early pharmacological inhibition of either chemokine (C-C motif) ligand (CCL2; by the inhibitor, mNOX-E36) or CCR2 (by the orally available dual CCR2/CCR5 inhibitor, cenicriviroc) reduces monocyte infiltration and APAP-induced liver injury (AILI) in mice. Importantly, neither the early nor continuous inhibition of CCR2 hinder repair processes during resolution from injury. In line with this, human livers of ALF patients requiring liver transplantation reveal increased CD68+ hepatic macrophage numbers with massive infiltrates of periportal CCR2+ macrophages that display a proinflammatory polarization.Infiltrating monocyte-derived macrophages aggravate APAP hepatotoxicity, and the pharmacological inhibition of either CCL2 or CCR2 might bear therapeutic potential by reducing the inflammatory reaction during the early phase of AILI. (Hepatology 2016;64:1667-1682).

Metabolic dysfunction-associated steatotic liver disease (MASLD) is hallmarked by hepatic steatosis, cell injury, inflammation, and fibrosis. This study elaborates on a multicellular biochip-based liver sinusoid model to mimic MASLD pathomechanisms and investigate the therapeutic effects of drug candidates lanifibranor and resmetirom. Mouse liver primary hepatocytes, hepatic stellate cells, Kupffer cells, and endothelial cells are seeded in a dual-chamber biocompatible liver-on-a-chip (LoC). The LoC is then perfused with circulating immune cells (CICs). Acetaminophen (APAP) and free fatty acids (FFAs) treatment recapitulate acute drug-induced liver injury and MASLD, respectively. As a benchmark for the LoC, multiplex immunofluorescence on livers from APAP-injected and dietary MASLD-induced mice reveals characteristic changes on parenchymal and immune cell populations. APAP exposure induces cell death in the LoC, and increased inflammatory cytokine levels in the circulating perfusate. Under FFA stimulation, lipid accumulation, cellular damage, inflammatory secretome, and fibrogenesis are increased in the LoC, reflecting MASLD. Both injury conditions potentiate CIC migration from the perfusate to the LoC cellular layers. Lanifibranor prevents the onset of inflammation, while resmetirom decreases lipid accumulation in hepatocytes and increases the generation of FFA metabolites in the LoC. This study demonstrates the LoC potential for functional and molecular evaluation of liver disease drug candidates.