Malignant gliomas are lethal cancers that display striking cellular heterogeneity. A highly tumorigenic glioma tumor subpopulation, termed cancer stem cells or tumor-initiating cells, promotes therapeutic resistance and tumor angiogenesis. Therefore, targeting cancer stem cells may improve patient survival. We interrogated the role of a neuronal cell adhesion molecule, L1CAM, in glioma stem cells as L1CAM regulates brain development and is expressed in gliomas. L1CAM(+) and CD133(+) cells cosegregated in gliomas, and levels of L1CAM were higher in CD133(+) glioma cells than normal neural progenitors. Targeting L1CAM using lentiviral-mediated short hairpin RNA (shRNA) interference in CD133(+) glioma cells potently disrupted neurosphere formation, induced apoptosis, and inhibited growth specifically in glioma stem cells. We identified a novel mechanism for L1CAM regulation of cell survival as L1CAM knockdown decreased expression of the basic helix-loop-helix transcription factor Olig2 and up-regulated the p21(WAF1/CIP1) tumor suppressor in CD133(+) glioma cells. To determine if targeting L1CAM was sufficient to reduce glioma stem cell tumor growth in vivo, we targeted L1CAM in glioma cells before injection into immunocompromised mice or directly in established tumors. In each glioma xenograft model, shRNA targeting of L1CAM expression in vivo suppressed tumor growth and increased the survival of tumor-bearing animals. Together, these data show that L1CAM is required for maintaining the growth and survival of CD133(+) glioma cells both in vitro and in vivo, and L1CAM may represent a cancer stem cell-specific therapeutic target for improving the treatment of malignant gliomas and other brain tumors.

In ovarian cancer, CD44 + /CD117 + stem cells, also known as cancer‐initiating cells (CICs), are highly proliferative, have a low degree of differentiation, and are resistant to chemotherapeutics. Therefore, the CD44 + /CD117 + subpopulation is thought to be an important target for novel therapeutic strategies. In this study, we investigated the role of microRNA‐199a (miR‐199a) in ovarian cancer stem cells. Luciferase reporter gene assays confirmed that miR‐199a targets CD44 via an miR‐199a‐binding site in the 3′‐UTR. CD44 + /CD117 + ovarian CICs were enriched from human primary ovarian tumor tissues and confirmed by flow cytometric sorting. miR‐199a was cloned and transfected into ovarian CICs. CD44 mRNA and protein expression was significantly decreased in miR‐199a‐transfected ovarian CICs as compared with miR‐199a mutant‐transfected and untransfected cells. Cell cycle analysis, 3‐(4,5‐dimethylthiazol‐2‐yl)‐2,5‐diphenyl‐tetrazolium bromide proliferation assays, the colony formation assay and the transwell migration assay indicated that miR‐199a significantly affected cell cycle regulation and suppressed the proliferation and invasive capacity of ovarian CICs in vitro . miR‐199a significantly increased the chemosensitivity of ovarian CICs to cisplatin, pacitaxel, and adriamycin, and reduced mRNA expression of the multidrug resistance gene ABCG2 as compared with miR‐199a mutant‐transfected and untransfected cells. The expression of stemness markers was also significantly reduced in miR‐199a‐transfected CICs as compared with miR‐199a mutant‐transfected and untransfected ovarian cells. Furthermore, xenograft experiments confirmed that miR‐199a suppressed the growth of xenograft tumors formed by ovarian CICs in vivo . Thus, expression of endogenous mature miR‐199a may prevent tumorigenesis in human ovarian cancer by regulating expression of its target gene CD44 .

To assess whether the integration of PD-1 inhibitor with total neoadjuvant therapy (iTNT) can lead to an improvement in complete responses (CRs) and favors a watch-and-wait (WW) strategy in patients with proficient mismatch repair or microsatellite stable (pMMR/MSS) locally advanced rectal cancer (LARC).