Headspace-solid phase microextraction/gas chromatography-mass spectrometry (HS-SPME/GC-MS) and electronic nose (E-nose) technologies were implemented to characterize the volatile profile of aerial part from 40 coriander varieties. A total of 207 volatile compounds were identified and quantified, including aldehydes, alcohols, terpenes, hydrocarbons, esters, ketones, acids, furans, phenols and others. E-nose results showed that W5S and W2W were representative sensors responding to coriander odor. Among all varieties, the number (21-30 species) and content (449.94-1050.55 μg/g) of aldehydes were the highest, and the most abundant analytes were (Z)-9-hexadecenal or (E)-2-tetratecenal, which accounted for approximately one-third of the total content. In addition, 37 components were determined the characteristic constituents with odor activity values (OAVs) ≥ 1, mainly presenting citrusy, fatty, soapy and floral smells. Hierarchical cluster analysis (HCA) and principal component analysis (PCA) could effectively distinguish different varieties. This study provided a crucial theoretical basis for flavor evaluation and quality improvement of coriander germplasm resources.

Salinity hinders plant growth and development, resulting in reduced crop yields and diminished crop quality. Nitric oxide (NO) and brassinolides (BR) are plant growth regulators that coordinate a plethora of plant physiological responses. Nonetheless, the way in which these factors interact to affect salt tolerance is not well understood. BR is perceived by the BR receptor BRASSINOSTEROID INSENSITIVE 1 (BRI1) and its co-receptor BRI1-associated kinase 1 (BAK1) to form the receptor complex, eventually inducing BR-regulated responses. To response stress, a wide range of NO-mediated protein modifications is undergone in eukaryotic cells. Here, we showed that BR participated in NO-enhanced salt tolerance of tomato seedlings (Solanum lycopersicum cv. Micro-Tom) and NO may activate BR signaling under salt stress, which was related to NO-mediated S-nitrosylation. Further, in vitro and in vivo results suggested that BAK1 (SERK3A and SERK3B) was S-nitrosylated, which was inhibited under salt condition and enhanced by NO. Accordingly, knockdown of SERK3A and SERK3B reduced the S-nitrosylation of BAK1 and resulted in a compromised BR response, thereby abolishing NO-induced salt tolerance. Besides, we provided evidence for the interaction between BRI1 and SERK3A/SERK3B. Meanwhile, NO enhanced BRI1-SERK3A/SERK3B interaction. These results imply that NO-mediated S-nitrosylation of BAK1 enhances the interaction BRI1-BAK1, facilitating BR response and subsequently improving salt tolerance in tomato. Our findings illustrate a mechanism by which redox signaling and BR signaling coordinate plant growth in response to abiotic stress.