Abstract Leaf chlorophyll is an important biochemical parameter used to assess plant health under stress. Chlorophyll is invariably estimated using destructive method of acetone or ethanol extraction. Reflectance spectroscopy such as IR, VIS–NIR, combined with chemometric, has been widely used in plant leaf chemical analysis. Here we report a cheap and reliable spectroscopic method of chlorophyll estimation using a low-cost handheld spectrometer. We standardized the method in a rice diversity panel of 264 genotypes using L*, a* and b* parameters using a randomly taken calibration and validation sample. The parameters used for fitting the regression analysis were L*, a*, b* and δ E that indicates deviation of L*, a* and b* values of sample from the chlorophyll solution of a known concentration. We fitted the regression of total chlorophyll in calibration sample with L*, a*, b* and δ E separately as well as multiple regression with all parameters. The best R 2 value (0.671) was observed for a* and the lowest for L* (0.436). Using multiple regression, the R 2 value increased to 0.778 (p < 0.005). We used the regression equation for validation sample and obtained R 2 value of 0.724 indicating reliable explanatory potential of variables. The parametric test for model reliability indicates good model fit of the observed relationship between chlorophyll content and L*, a*, b* and δ E. The method is cost effective, non-destructive and takes less time (< 10 s) and can be conveniently used for screening large diversity panels especially in case of repeated measurements across growth stages under stress.

Abstract Root plasticity enables plants to adapt to spatial and temporal changes in soil resources. In this study, 40 common bean genotypes evaluated for two root and shoot traits under irrigated and water stress. Three genotypes WB-216, WB-N-2, and WB-966 with contrasting plasticity responses were used for in-depth study. Highest positive plasticity for most root traits was found in case of WB-N2 and WB-216, whereas, WB-966 had negative plasticity for all the traits recorded. In terms of spatial plasticity for root traits in three root length sections, WB-216 was positively plastic for root diameter with progressive decrease from top to bottom sections. WB-N2 had positive plasticity values for root diameter, root surface area and root volume. WB-966 had negative plasticity for all the traits. For WB-216, the root diameter increased under drought in S1 but was almost same in bottom sections. In case of WB-N2, there was increase in root diameter in S2 and S3, but for WB-966, root diameter decreased in all sections. Similar trend was observed in all three genotypes for root surface area and volume. We report that major drivers of spatial plasticity of root architectural traits are increased root diameter, surface area and volume at deeper layers.

Sweet cherry cultivated in temperate climatic conditions, undergoes a period of dormancy to survive the low temperature of winter season and also for successful flowering. This study investigated the variations in bud length, diameter and total sugar of two commercially significant sweet cherry cultivars, Burlat and Regina, throughout three distinct phases of dormancy: paradormancy, endodormancy and ecodormancy. Buds from both cultivars were sampled at 15 days intervals starting during 1st August till 15th of March. Results revealed increase in bud length and diameter during paradormancy period. During endodormancy, both cultivars exhibited minimal changes in bud length and diameter, indicating metabolic dormancy. Subsequent to the release of endodormancy, bud length and diameter showed a gradual increase during ecodormancy, suggesting preparation for growth resumption.Total sugars showed reverse trend i.e., its concentration was recorded highest during endodormancy phase.