Abstract Unravelling the mechanisms for the immunosuppressive tumor microenvironment and developing corresponding therapeutic strategies are of great importance to improve the cancer immunotherapy. This study has revealed that there are abundant senescent cells accumulated in the colon cancer tissue, which contributes greatly to the immunosuppressive microenvironment. Oral delivery of Dasatinib and Quercetin (D+Q) eliminates the senescent cells with compromised efficiency due to the poor tumor penetration and short half‐life. To improve the efficacy of senescent cell clearance, this work has developed an extracellular vesicle (EV) based senolytic strategy. The engineered senolytic EVs have anti‐GPNMB (a senescent cell surface marker) displayed on the surface and D+Q loaded on the membrane. In a syngeneic mouse model, senolytic EVs efficiently and selectively eradicate the senescent cells and in turn unleashes the antitumor immunity. With the antitumor immunity boosted, cancer growth is inhibited and the survival is prolonged. In summary, this work has illuminated that senescent cells contribute to the immunosuppressive microenvironment in colon cancer and proposes a novel strategy to conquer the problem by EV‐based senolytics.

Background Keloid is a chronic proliferative fibrotic disease caused by abnormal fibroblasts proliferation and excessive extracellular matrix (ECM) production. Numerous fibrotic disorders are significantly influenced by ferroptosis, and targeting ferroptosis can effectively mitigate fibrosis development. This study aimed to investigate the role and mechanism of ferroptosis in keloid development. Methods Keloid tissues from keloid patients and normal skin tissues from healthy controls were collected. Iron content, lipid peroxidation (LPO) level, and the mRNA and protein expression of ferroptosis-related genes including solute carrier family 7 member 11 (SLC7A11), glutathione peroxidase 4 (GPX4), transferrin receptor (TFRC), and nuclear factor erythroid 2-related factor 2 (Nrf2) were determined. Mitochondrial morphology was observed using transmission electron microscopy (TEM). Keloid fibroblasts (KFs) were isolated from keloid tissues, and treated with ferroptosis inhibitor ferrostatin-1 (fer-1) or ferroptosis activator erastin. Iron content, ferroptosis-related marker levels, LPO level, mitochondrial membrane potential, ATP content, and mitochondrial morphology in KFs were detected. Furthermore, the protein levels of α-smooth muscle actin (α-SMA), collagen I, and collagen III were measured to investigate whether ferroptosis affect fibrosis in KFs. Results We found that iron content and LPO level were substantially elevated in keloid tissues and KFs. SLC7A11, GPX4, and Nrf2 were downregulated and TFRC was upregulated in keloid tissues and KFs. Mitochondria in keloid tissues and KFs exhibited ferroptosis-related pathology. Fer-1 treatment reduced iron content, restrained ferroptosis and mitochondrial dysfunction in KFs, Moreover, ferrostatin-1 restrained the protein expression of α-SMA, collagen I, and collagen III in KFs. Whereas erastin treatment showed the opposite results. Conclusion Ferroptosis exists in keloid. Ferrostatin-1 restrained ECM deposition and fibrosis in keloid through inhibiting ferroptosis, and erastin induced ECM deposition and fibrosis through intensifying ferroptosis.