Abstract Background This study developed a nomogram model using CT-based delta-radiomics features and clinical factors to predict pathological complete response (pCR) in esophageal squamous cell carcinoma (ESCC) patients receiving neoadjuvant chemoradiotherapy (nCRT). Methods The study retrospectively analyzed 232 ESCC patients who underwent pretreatment and post-treatment CT scans. Patients were divided into training (n = 186) and validation (n = 46) sets through fivefold cross-validation. 837 radiomics features were extracted from regions of interest (ROIs) delineations on CT images before and after nCRT to calculate delta values. The LASSO algorithm selected delta-radiomics features (DRF) based on classification performance. Logistic regression constructed a nomogram incorporating DRFs and clinical factors. Receiver operating characteristic (ROC) and area under the curve (AUC) analyses evaluated nomogram performance for predicting pCR. Results No significant differences existed between the training and validation datasets. The 4-feature delta-radiomics signature (DRS) demonstrated good predictive accuracy for pCR, with α-binormal-based and empirical AUCs of 0.871 and 0.869. T-stage ( p = 0.001) and differentiation degree ( p = 0.018) were independent predictors of pCR. The nomogram combined the DRS and clinical factors improved the classification performance in the training dataset (AUC αbin = 0.933 and AUC emp = 0.941). The validation set showed similar performance with AUCs of 0.958 and 0.962. Conclusions The CT-based delta-radiomics nomogram model with clinical factors provided high predictive accuracy for pCR in ESCC patients after nCRT.

Nonalcoholic steatohepatitis (NASH) is emerging as a major cause of liver transplantation and hepatocellular carcinoma (HCC). Regrettably, its pathological mechanisms are still not fully comprehended. GTP-binding protein 8 (GTPBP8), belonging to the GTP-binding protein superfamily, assumes a crucial role in RNA metabolism, cell proliferation, differentiation, and signal transduction. Its aberrant expression is associated with oxidative stress and mitochondrial dysfunctions. Nevertheless, its specific functions and mechanisms of action, particularly in NASH, remain elusive. In our current study, we initially discovered that human hepatocytes L02 displayed evident mitochondrial respiratory anomaly, mitochondrial damage, and dysfunction upon treatment with palmitic acids and oleic acids (PO), accompanied by significantly reduced GTPBP8 expression levels through RNA-Seq, RT-qPCR, western blotting, and immunofluorescence assays. We then demonstrated that GTPBP8 overexpression mediated by adenovirus vector (Ad-GTPBP8) markedly attenuate lipid accumulation, inflammatory response, and mitochondrial impair and dysfunction in hepatocytes stimulated by PO. Conversely, adenovirus vector-mediated GTPBP8 knockdown (Ad-shGTPBP8) significantly accelerated lipid deposition, inflammation and mitochondrial damage in PO-treated hepatocytes in vitro. Furthermore, we constructed an in vivo NASH murine model by giving a 16-week high fat high cholesterol diet (HFHC) diet to hepatocyte specific GTPBP8-knockout (GTPBP8