The use of novel isolates of Trichoderma with efficient antagonistic capacity against Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (FOL) is a promising alternative strategy to pesticides for tomato wilt management. We evaluated the antagonistic activity of 30 isolates of T. asperellum against 4 different isolates of FOL. The production of extracellular cell wall degrading enzymes of the antagonistic isolates was also measured. The random amplified polymorphic DNA (RAPD) method was applied to assess the genetic variability among the T. asperellum isolates. All of the T. asperellum isolates significantly reduced the mycelial growth of FOL isolates but the amount of growth reduction varied significantly as well. There was a correlation between the antagonistic capacity of T. asperellum isolates towards FOL and their lytic enzyme production. Isolates showing high levels of chitinase and Î²-1,3-glucanase activities strongly inhibited the growth of FOL isolates. RAPD analysis showed a high level of genetic variation among T. asperellum isolates. The UPGMA dendrogram revealed that T. asperellum isolates could not be grouped by their anta- gonistic behavior or lytic enzymes production. Six isolates of T. asperellum were highly antagonistic towards FOL and potentially could be used in commercial agriculture to control tomato wilt. Our results are consistent with the conclusion that understanding the genetic variation within Trichoderma isolates and their biochemical capabilities are required for the selection of effective indigenous fungal strains for the use as biocontrol agents. Keywords: cell wall degrading enzymes, Fusarium wilt, molecular markers, mycoparasitism, T. asperellum

Gray mold disease, caused by Botrytis cinerea is a major postharvest disease impacting fruits such as strawberries and tomatoes. This study explores the use of volatile organic compounds (VOCs) produced by Bacillus spp. as eco-friendly biocontrol agents against B. cinerea. In vitro experiments demonstrated that VOCs from Bacillus sp. LNXM12, B. thuringiensis GBAC46, and B. zhanghouensis LLTC93-VOCs inhibited fungal growth by 61.2%, 40.5%, and 21.6%, respectively, compared to the control. LNXM12 was selected for further experiments due to its highest control efficacy of 58.3% and 76.6% on tomato and strawberry fruits, respectively. The LNXM12 VOCs were identified through gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) analysis, and 22 VOCs were identified. Synthetic VOCs with the highest probability percentage, namely ethyloctynol, 3-methyl-2-pentanone (3M2P), 1,3-butadiene-N, N-dimethylformamide (DMF), and squalene were used in experiments. The results showed that the synthetic VOCs ethyloctynol and 3M2P were highly effective, with an inhibition rate of 56.8 and 57.1% against fungal mycelium radial growth at 120 μg/mL on agar plates. Trypan blue staining revealed strongly disrupted, deeper blue, and lysed mycelium in VOC-treated B. cinerea. The scanning and transmission electron microscope (SEM and TEM) results showed that fungal mycelium was smaller, irregular, and shrunken after synthetic VOC treatments. Furthermore, the synthetic VOCs Ethyloctynol and 3M2P revealed high control efficacy on tomatoes and strawberries infected by B. cinerea. The control efficacy on leaves was 67.2%, 66.1% and 64.5%, 78.4% respectively. Similarly, the control efficiency on fruits was 45.5%, 67.3% and 46.3% 65.1%. The expression of virulence genes in B. cinerea was analyzed, and the results revealed that selected genes BcSpl1, BcXyn11A, BcPG2, BcNoxB, BcNoxR, and BcPG1 were downregulated after VOCs treatment. The overall result revealed novel mechanisms by which Bacillus sp. volatiles control postharvest gray mold disease.