The objective of this study was to create injectable photo-crosslinkable biomaterials, using gelatin methacryloyl (GelMA) hydrogel, combined with a decellularized bone matrix (BMdc) and a deproteinized (BMdp) bovine bone matrix. These were intended to serve as bioactive scaffolds for dentin regeneration. The parameters for GelMA hydrogel fabrication were initially selected, followed by the incorporation of BMdc and BMdp at a 1% (w/v) ratio. Nano-hydroxyapatite (nHA) was also included as a control. A physicochemical characterization was conducted, with FTIR analysis indicating that the mineral phase was complexed with GelMA, and BMdc was chemically bonded to the amide groups of gelatin. The porous structure was preserved post-BMdc incorporation, with bone particles incorporated alongside the pores. Conversely, the mineral phase was situated inside the pore opening, affecting the degree of porosity. The mineral phase did not modify the degradability of GelMA, even under conditions of type I collagenase-mediated enzymatic challenge, allowing hydrogel injection and increased mechanical strength. Subsequently, human dental pulp cells (HDPCs) were seeded onto the hydrogels. The cells remained viable and proliferative, irrespective of the GelMA composition. All mineral phases resulted in a significant increase in alkaline phosphatase activity and mineralized matrix deposition. However, GelMA-BMdc exhibited higher cell expression values, significantly surpassing those of all other formulations. In conclusion, our results showed that GelMA-BMdc produced a porous and stable hydrogel, capable of enhancing odontoblastic differentiation and mineral deposition when in contact with HDPCs, thereby showing potential for dentin regeneration.

To evaluate the influence of solvents on the mechanical stability and dentin sealing ability of adhesive interfaces produced on dry dentin after collagen biomodification with a proanthocyanidin-rich grape seed extract (GSE). Flat dentin surfaces (N = 120) were initially divided into 10 groups. After phosphoric acid etching for 15s, the etched dentin was treated with: water (control), 5 % ethanol, 90 % ethanol, 5 % acetone, 90 % acetone, and the same groups added with 5 % GSE. The treatments were kept on the etched dentin for 60s. Then, the teeth of each treatment were further divided into two groups. Thus, after rinsing, the dentin was kept moist (wet bonding) or air-dried for 60 s (dry bonding). A water-free two-step etch-and-rinse adhesive system (Optibond S, Kerr) was applied, and composite blocks were built up. The teeth were tested for bond strength (μTBS) immediately or after 12 months of aging. Considering the μTBS results, additional teeth were prepared for qualitative analysis of nanoleakage (NL; SEM) and hybrid layer permeability (CLSM). The μTBS data were analyzed with three-way RM ANOVA and Tukey (α = 0.05). The immediate μTBS did not differ among treatments for wet dentin. For dry dentin, GSE in 5 % ethanol or acetone presented the highest μTBS values, the latter similar to wet control. After 12 months, μTBS of GSE in 5 % ethanol or acetone were comparable to the immediate results for wet and dry techniques. These reduced NL and improved dentin sealing for both dentin wetness conditions like the immediate wet control. The application of 5 % GSE to etched dentin, either in 5 % ethanol or 5 % acetone, resulted in enhanced mechanical stability and dentin sealing of interfaces produced on dry dentin. Dentin biomodification with proanthocyanidin in the presence of ethanol or acetone makes bonding procedures less sensitive by eliminating the need to keep dentin wet and increasing the quality and stability of hybrid layers produced on dry etched dentin.

ABSTRACT Objectives To evaluate the color change and trans‐amelodentinal cytotoxicity of a 22% carbamide peroxide (CP) bleaching gel containing different concentration of manganese oxide (MnO 2 ). Material and Methods Enamel/dentin discs adapted to artificial pulp chambers were distributed according to treatments: CN—No treatment; CP22%–22%CP; CP22 + 2MnO 2 –22%CP + 2 mg/mLMnO 2 ; CP22% + 6MnO 2 –22%CP + 6 mg/mLMnO 2 ; CP22% + 10MnO 2 –22%CP + 10 mg/mLMnO 2 applied for 2 h for 15 days. Color change—CC (ΔE 00 and ΔWI D ) ( n = 8) was determined at 5, 10, and 15‐day periods (ANOVA/Sidak). Trans‐amelodentinal cytotoxicity (TC) was assessed after applying the extracts to cultured MDPC‐23 cells, which were analyzed concerning their viability (Vi) ( n = 8) and oxidative stress (OxS) ( n = 8). The amount of hydroxyl radical (OH • ) ( n = 4) generated by H 2 O 2 degradation (ANOVA/Sidak), and trans‐amelodentinal diffusion of H 2 O 2 ( n = 8) (ANOVA/Tukey) were also evaluated. Results CP22 + 10MnO 2 presented higher CC than CP22 for both evaluated equations in all analysis periods ( p ≤ 0.04). Among bleached groups, CP22 + 10MnO 2 presented the highest OH • generation ( p ≤ 0.02) and the lowest trans‐amelodentinal diffusion of H 2 O 2 ( p ≤ 0.0004). Therefore, MDPC‐23 cells in CP22 + 10MnO 2 exhibited the lowest OxS ( p < 0.0001) and consequently the highest Vi ( p ≤ 0.0146). Conclusion Besides increasing the bleaching efficacy, the strategy of adding 10 mg/mL of MnO 2 to a 22%CP bleaching gel also reduces significantly the trans‐amelodentinal diffusion of H 2 O 2 , diminishing the cytotoxicity caused by at‐home bleaching therapy. Clinical Significance The addition of MnO 2 to a 22% carbamide peroxide bleaching gel improves the color change and reduces the cytotoxicity effects of the product, making at‐home bleaching faster and biologically safer.