Ferroptosis adversely affects the viability, differentiation, and metabolic integrity of C2C12 myoblasts, contributing to the decline in skeletal muscle health. The intricate mechanisms behind this process are not fully understood. In this study, we induced ferroptosis in myoblasts using targeted inducers and found a marked decrease in specific redox metabolites, particularly taurine. Taurine supplementation effectively reversed the deleterious effects of ferroptosis, significantly increased cellular glutathione levels, reduced MDA and ROS levels, and rejuvenated impaired myogenic differentiation. Furthermore, taurine downregulated HO-1 expression and decreased intracellular Fe

The aim of this study was to investigate the potential molecular mechanisms by which taurine protects against cartilage degeneration. The anterior cruciate ligament transection (ACLT) surgery was used to construct an animal model of osteoarthritis (OA). Metabolomics was used to identify characteristic metabolites in osteoarthritic chondrocytes. Transcriptomics and metabolomics were used to explore potential mechanisms by which the small molecule metabolite taurine protects against inflammatory chondrocyte damage. Cell transfection and small molecule inhibitors/agonists were used to validate the molecular mechanisms by which taurine protects inflammatory chondrocytes in vitro. Finally, adeno-associated virus and small molecule inhibitors/agonists were used to validate the molecular mechanisms by which taurine protects against cartilage degeneration in vivo. Metabolomic assays identified taurine as a possible key metabolic molecule in the progression of OA. Transcriptomics and metabolomics revealed that O-GlcNAc transferase (OGT)-dependent O-GlcNAcylation and Gpx4-dependent ferroptosis may mediate the inflammatory protective effects of taurine on chondrocytes, which was further confirmed by gain and loss of function in vitro. Subsequently, further experiments indicated that the possible existence of a direct binding site for Gpx4 and OGT proteins, which provides evidence for the presence of O-GlcNAc modification of Gpx4 protein. Finnaly, we demonstrated that Gpx4-dependent ferroptosis and OGT-dependent O-GlcNAcylation may be potential mechanisms by which taurine protects against cartilage degeneration in vivo. Antioxidant taurine inhibits chondrocyte ferroptosis through upregulation of OGT/Gpx4 signaling. Supplementation with taurine, a safe nonessential amino acid, may be a potential therapeutic strategy for OA.

Skeletal muscle aging poses a major threat to the health and quality of life of elderly individuals. Fisetin, a natural polyphenolic compound, exhibits various biological activities; however, its role in preventing skeletal muscle cell aging is still unclear. This study aimed to elucidate the effects of fisetin on skeletal muscle aging using a d-galactose-induced C2C12 myoblast senescence model. Fisetin treatment effectively ameliorated d-galactose-induced aging damage and restored cellular functionality by improving cell viability, reducing the accumulation of the senescence marker enzyme SA-β-gal, and decreasing the expression of key aging marker proteins, p16 and p53. NMR-based metabolomics and RNA-seq transcriptomics analyses revealed that fisetin regulates several critical metabolic pathways, including glutathione metabolism, glycine, serine and threonine metabolism, as well as taurine and hypotaurine metabolism. This regulation led to the restoration of amino acid metabolism, stabilization of cellular energy homeostasis, and the preservation of membrane integrity. In addition, fisetin inhibited calcium signaling and JAK-STAT pathways, reduced cellular stress responses and reversed senescence-induced cell cycle arrest. Together, these findings highlight the potential of fisetin as a therapeutic agent to combat skeletal muscle aging and restore cellular homeostasis, offering a promising avenue for the development of antiaging treatments for skeletal muscle degeneration.