Abstract Cardiotrophin-like cytokine factor 1 (CLCF1) is an IL-6 family cytokine with neurotrophic and immuno-modulating functions. CLCF1 mRNA has been detected in primary and secondary lymphoid organs, and up-regulation of CLCF1 mRNA levels has been associated with the T helper (Th) 17 polarization. However, information regarding CLCF1 expression by immune cells at the protein level remains scarce. We have developed a methodology that uses a monoclonal antibody (mAb) directed against CLCF1 for the detection of human and mouse CLCF1 by flow cytometry. We have successfully detected CLCF1 protein expression in cells from the mouse pro-B cell line Ba/F3 that were transduced with CLCF1 cDNA. Interestingly, we found that the anti-CLCF1 mAb inhibits CLCF1 biological activity in vitro by binding to an epitope that encompasses site III of the cytokine. Moreover, we have detected CLCF1 expression in mouse splenic T cells, as well as in vitro differentiated Th1 cells. The specificity of the fluorescence signal was demonstrated using Clcf1 -deficient lymphocytes generated using a conditional knock-out mouse model. The detection of CLCF1 protein by flow cytometry will be a valuable tool to study CLCF1 expression during normal and pathological immune responses.

E3 ubiquitin ligases are part of various families of proteins and include hundreds of members, which play key roles in all aspects of cell biology. They generally regulate the half-life of other proteins but can also modulate their cellular localization and functions. The MARCH family of ubiquitin ligases is composed of 11 members and two closely related proteins, MARCH1 and MARCH8, share similar targets, while being active in different cell types. Although they appear to target principally immune cell components, such as MHC class II molecules and the co-stimulatory molecule CD86, the repertory of their targets remains to be fully documented. Here, to further define the MARCH1's interactome, we adapted a proximity-dependent biotin identification (BioID)-based screening approach in live HEK293 cells. We transfected a fusion protein consisting of mouse MARCH1 linked to YFP at its N-terminus and to the biotin ligase of Aquifex aeolicus at its C-terminus. Upon transient overexpression of this construct in the presence of exogenous biotin, we could recover biotinylated proteins that are presumably found within 10nm of MARCH1. To help in the identification of bona fide down-regulated specific targets, we compared MARCH1's interactome with the one obtained using a ubiquitination-deficient MARCH1 mutant (MARCH1W104A). CD98 and CD71, two previously described targets of MARCH1, were identified in this screen. Of 16 other biotinylated proteins identified by semi-quantitative mass spectrometry, 10 were tested directly by flow cytometry to monitor their expression in the presence or absence of transfected MARCH1. The protein levels of five of these endogenous targets, CD29, CD112, NKCC1, CD147 and SNAT2, confirmed their negative regulation by MARCH1 in this system. SNAT2 was particularly sensitive to the presence of MARCH1 and was found to be ubiquitinated on Western blots following immunoprecipitation. Thus, BioID2 is an effective mean of characterizing the interactome of MARCH1 and the identification of SNAT2 suggests a role of this ubiquitin ligase in cellular metabolism.