Spinal cord injury (SCI) can lead to severe motor and sensory dysfunction with high disability and mortality. In recent years, mesenchymal stem cell (MSC)-secreted nano-sized exosomes have shown great potential for promoting functional behavioral recovery following SCI. However, MSCs are usually exposed to normoxia in vitro, which differs greatly from the hypoxic micro-environment in vivo. Thus, the main purpose of this study was to determine whether exosomes derived from MSCs under hypoxia (HExos) exhibit greater effects on functional behavioral recovery than those under normoxia (Exos) following SCI in mice and to seek the underlying mechanism.Electron microscope, nanoparticle tracking analysis (NTA), and western blot were applied to characterize differences between Exos and HExos group. A SCI model in vivo and a series of in vitro experiments were performed to compare the therapeutic effects between the two groups. Next, a miRNA microarray analysis was performed and a series of rescue experiments were conducted to verify the role of hypoxic exosomal miRNA in SCI. Western blot, luciferase activity, and RNA-ChIP were used to investigate the underlying mechanisms.Our results indicate that HExos promote functional behavioral recovery by shifting microglial polarization from M1 to M2 phenotype in vivo and in vitro. A miRNA array showed miR-216a-5p to be the most enriched in HExos and potentially involved in HExos-mediated microglial polarization. TLR4 was identified as the target downstream gene of miR-216a-5p and the miR-216a-5p/TLR4 axis was confirmed by a series of gain- and loss-of-function experiments. Finally, we found that TLR4/NF-κB/PI3K/AKT signaling cascades may be involved in the modulation of microglial polarization by hypoxic exosomal miR-216a-5p.Hypoxia preconditioning represents a promising and effective approach to optimize the therapeutic actions of MSC-derived exosomes and a combination of MSC-derived exosomes and miRNAs may present a minimally invasive method for treating SCI.

Abstract Spinal cord injury (SCI) can cause severe irreversible motor dysfunction and even death. Neural stem cell (NSC) transplantation can promote functional recovery after acute SCI in experimental animals, but numerous issues, including low-transplanted cell survival rate, cell de-differentiation, and tumor formation need to be resolved before routine clinical application is feasible. Recent studies have shown that transplanted stem cells facilitate regeneration through release of paracrine factors. Small extracellular vesicles (sEVs), the smallest known membrane-bound nanovesicles, are involved in complex intercellular communication systems and are an important vehicle for paracrine delivery of therapeutic agents. However, the application of NSC-derived small extracellular vesicles (NSC-sEVs) to SCI treatment has not been reported. We demonstrate that NSC-sEVs can significantly reduce the extent of SCI, improve functional recovery, and reduce neuronal apoptosis, microglia activation, and neuroinflammation in rats. Furthermore, our study suggests that NSC-sEVs can regulate apoptosis and inflammatory processes by inducing autophagy. In brief, NSC-sEVs increased the expression of the autophagy marker proteins LC3B and beclin-1, and promoted autophagosome formation. Following NSC-sEV infusion, the SCI area was significantly reduced, and the expression levels of the proapoptotic protein Bax, the apoptosis effector cleaved caspase-3, and the pro-inflammatory cytokines TNF-α, IL-1β, and IL-6 were significantly reduced, whereas the expression level of the anti-apoptotic protein Bcl-2 was upregulated. In the presence of the autophagy inhibitor 3MA, however, these inhibitory effects of NSC-sEVs on apoptosis and neuroinflammation were significantly reversed. Our results show for the first time that NSC-sEV treatment has the potential to reduce neuronal apoptosis, inhibit neuroinflammation, and promote functional recovery in SCI model rats at an early stage by promoting autophagy.

Abstract Spinal cord injury (SCI) is a severe neurological condition that frequently leads to significant sensory, motor, and autonomic dysfunction. This study sought to delineate the potential mechanistic underpinnings of extracellular vesicles (EVs) derived from ginsenoside Rg1‐pretreated neuronal cells (Rg1‐EVs) in ameliorating SCI. These results demonstrated that treatment with Rg1‐EVs substantially improved motor function in spinal cord‐injured mice. Rg1‐EVs enhance microglial polarization toward the M2 phenotype and repressed oxidative stress, thereby altering immune responses and decreasing inflammatory cytokine secretion. Moreover, Rg1‐EVs substantially diminish reactive oxygen species accumulation and enhanced neural tissue repair by regulating mitochondrial function. Proteomic profiling highlighted a significant enrichment of MYCBP2 in Rg1‐EVs, and functional assays confirmed that MYCBP2 knockdown counteracted the beneficial effects of Rg1‐EVs in vitro and in vivo. Mechanistically, MYCBP2 is implicated in the ubiquitination and degradation of S100A9, thereby promoting microglial M2‐phenotype polarization and reducing oxidative stress. Overall, these findings substantiated the pivotal role of Rg1‐EVs in neuronal protection and functional recovery following SCI through MYCBP2‐mediated ubiquitination of S100A9. This research offers novel mechanistic insights into therapeutic strategies against SCI and supports the clinical potential of Rg1‐EVs.