Abstract Objectives We sought to investigate the morphologic and immunophenotypic characteristics of TCL1 family–negative T-cell prolymphocytic leukemia (T-PLL) Methods Twenty cases of TCL1 family–negative T-PLL were studied. Results The doubling time of leukemic cells ranged from less than 2 days to more than 5 years, with a median of 5.5 months. Leukemic cells were small to medium-sized, with round to irregular nuclei, variably condensed chromatin, and small amounts of agranular cytoplasm. A visible nucleolus was identified in 11 (55%) cases. Cytoplasmic blebs/protrusions were identified in all cases, but their occurrence was highly variable from case to case. Bone marrow biopsy showed an interstitial pattern in 90% of cases and a diffuse pattern in the remaining 10% of cases. Flow cytometric immunophenotypic analysis showed that the leukemic cells in all cases were CD4 positive; 3 (15%) also showed concurrent CD8 expression. All cases were positive for CD2 and CD5. Surface CD3 and CD7 were positive in 19 of 20 (95%) cases, and all CD3-positive cases expressed the T-cell receptor αβ. Compared with prototypic T-PLL cases, these 2 groups shared many immunophenotypic findings, except CD8 and CD26, both of which were more commonly expressed in prototypic T-PLL cases. Conclusions TCL1 family–negative T-PLL cases have morphologic and immunophenotypic features that are similar to prototypic T-PLL. They are characterized by neoplastic proliferation of small to medium-sized mature T cells with CD4-positive T-cell receptor αβ phenotype. Tumor cells frequently maintain pan-T antigen expression. Recognizing these morphologic and immunophenotypic features will aid in accurately diagnosing this rare subset of T-PLL.

Context.— Flow cytometry immunophenotypic analysis plays an important role in the diagnosis, classification, and disease monitoring of hematologic neoplasms. The interpretation of flow cytometry testing can be challenging. Objective.— To explore ways to improve diagnostic accuracy and in turn enhance the quality of patient care. Design.— A flow cytometry quality assurance (QA) program was developed. Cases from various complex flow cytometry panels were randomly selected and cross-reviewed. The outcomes of the QA review were categorized into 3 groups: complete agreement, minor discrepancy, and major discrepancy. Each discrepancy underwent a process of documentation, discussion, and resolution. Here we summarize our 3 years of experience with this program. Results.— In total, 6166 cases were evaluated; 6028 cases (97.7%) showed complete concordance, 120 cases (2.0%) showed minor discrepancies, and 18 cases (0.3%) showed major discrepancies. Among the top 5 panels evaluated, the panel evaluating mature T-cell abnormalities showed the highest rate of discrepancy, whereas the panel for evaluation of myelodysplastic syndromes showed the lowest discrepancy rate. When analyzing the trends of concordance and discrepancy over time, we observed a statistically significant decrease in discrepancy rate over time, from 4% at the beginning of the 6-month period to 1.5% in the final 6-month period. Conclusions.— The overall concordance rate was 97.7%. The remaining 2.3% of cases showed discrepancies that required a correction, underscoring the value and necessity of having a QA program. The overall discrepancy rates exhibited a gradual decline over time, indicative of the positive impact of the QA program on enhancing diagnostic competency and accuracy over time.

Abstract Objectives We sought to characterize the immunophenotype of acute myeloid leukemia (AML) with CBFB rearrangement and correlate the results with cytogenetic and molecular data. Methods Sixty-one cases of AML with CBFB rearrangement were evaluated. Results The sample population consisted of 33 men and 28 women, with a median age of 49 years. Flow cytometry immunophenotypic analysis showed that myeloblasts were positive for CD34 and CD117 in all cases, and myeloperoxidase was positive in 52 of 55 (95%) cases. The most common abnormalities included decreased CD38 in 90%, increased CD13 in 85%, increased CD123 in 84%, and decreased HLA-DR in 84% of cases. Monocytes were increased, with a mature immunophenotype, and accounted for 23.7% of total cells. Among 60 cases with available karyotype, inv(16)(p13.1q22) was most common in 50 (83%) cases, followed by t(16;16) (p13.1;q22) in 6 (10%). Type A CBFB::MYH11 transcript was most common, detected in 84% of cases. Mutational analysis showed mutations of NRAS in 37%, FLT3 in 25%, and KIT in 24% of cases. Comparing cases with type A vs non–type A transcripts, blasts in type A cases more frequently exhibited CD64 positivity and increased CD13 levels while showing a lower frequency of CD7 and CD56 expression. Trisomy 22 and mutations in KIT, NF1, and TET2 were identified only in cases with type A transcript. Conclusions Myeloblasts of AML with CBFB rearrangement are positive for CD34, CD117, and myeloperoxidase. These neoplasms most frequently carry inv(16)(p13.1q22) and type A fusion transcript. NRAS mutation was the most common mutation. Some immunophenotypic and genetic correlations occurred with different types of transcripts.