A clear understanding of the genetic basis of antibiotic resistance in Mycobacterium tuberculosis is required to accelerate the development of rapid drug susceptibility testing methods based on genetic sequence. Raw genotype–phenotype correlation data were extracted as part of a comprehensive systematic review to develop a standardised analytical approach for interpreting resistance associated mutations for rifampicin, isoniazid, ofloxacin/levofloxacin, moxifloxacin, amikacin, kanamycin, capreomycin, streptomycin, ethionamide/prothionamide and pyrazinamide. Mutation frequencies in resistant and susceptible isolates were calculated, together with novel statistical measures to classify mutations as high, moderate, minimal or indeterminate confidence for predicting resistance. We identified 286 confidence-graded mutations associated with resistance. Compared to phenotypic methods, sensitivity (95% CI) for rifampicin was 90.3% (89.6–90.9%), while for isoniazid it was 78.2% (77.4–79.0%) and their specificities were 96.3% (95.7–96.8%) and 94.4% (93.1–95.5%), respectively. For second-line drugs, sensitivity varied from 67.4% (64.1–70.6%) for capreomycin to 88.2% (85.1–90.9%) for moxifloxacin, with specificity ranging from 90.0% (87.1–92.5%) for moxifloxacin to 99.5% (99.0–99.8%) for amikacin. This study provides a standardised and comprehensive approach for the interpretation of mutations as predictors of M. tuberculosis drug-resistant phenotypes. These data have implications for the clinical interpretation of molecular diagnostics and next-generation sequencing as well as efficient individualised therapy for patients with drug-resistant tuberculosis.

Background Children with under-five year age disproportionally affected with foodborne illness. Campylobacteriosis is the most common foodborne disease next to Norovirus infection. Macrolides are commonly prescribed as the first line of treatment for Campylobacter gastroenteritis, with fluoroquinolone and tetracycline as secondary options. However, resistance to these alternatives has been reported in various regions worldwide. Objective To determine the prevalence, associated risk-factors and antimicrobial resistance of Campylobacter jejuni and C . coli among under-five children with diarrhea. Methods Institution-based cross-sectional study was conducted from November, 2022 to April 2023. The study sites were selected using a random sampling technique, while the study subjects were included using a convenient sampling technique. The data were collected using a structured questionnaire. Stool samples were inoculated onto modified charcoal cefoperazone deoxycholate agar and incubated for 48 hours. The suspected colonies were analyzed using matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry to confirm the species. Antimicrobial susceptibility testing was performed using a disc diffusion technique. All potential covariates (independent variables) were analyzed one by one using bivariate logistic regression model to identify candidate variables with P value < 0 . 25 . Multivariable logistic analysis was used to identify potential associated factors using the candidate variables. A p value ≤ 0 . 05 at a 95% confidence interval was statistically significant. Result Among the 428 samples, 7.0% (CI: 4.5–9.3) were confirmed Campylobacter species. The prevalence of C . jejuni and C . coli among under-five children was 5.1% (CI: 3.0–7.0) and 1.9% (CI: 0.7–3.3), respectively. C . jejuni (73.3%) was dominant over C . coli (26.7%). The resident, contact with domestic animals, and parents/guardians education level were significantly associated with campylobacteriosis among under-five children. One-third of the Campylobacter isolates (33.3%, 10/30) were resistant to ciprofloxacin and tetracycline whereas 10.0% (3/30) were resistant to erythromycin. Furthermore, 3.3% (1/30) of the Campylobacter were found to be multidrug-resistant. Conclusion The prevalence of Campylobacter species was 7.0%. The resistance rate of Campylobacter species of ciprofloxacin and tetracycline-resistance strains was 33.3%. Peri-urban residence, contact with domestic animals, and low parental educational statuses were significantly associated factors with increased risk of Campylobacter infection. Continuous surveillance on antimicrobial resistance and health education of personal and environmental hygiene should be implemented in the community.

Rotavirus A (RVA) is one of the major viral causes of acute gastroenteritis in calves globally. Bovine RVA can represent a public health concern as it is capable of zoonotic transmission. We assessed the burden, genotype distribution, and zoonotic potential of RVA among calves in Amhara National Regional State, Ethiopia. A multi-center cross-sectional study was conducted involving a total of 266 calves. Clinical data and fecal samples were collected by trained veterinarians. Total RNA was extracted using QIAamp viral RNA mini kit and RVA was detected by One-step qRT-PCR. Amplification and Sanger sequencing of VP7 and VP4 genes were performed to determine G-types and P-types of the circulating RVA, respectively. The prevalence of RVA among calves was 41/266 (15.4%, 95% CI=11.3%-19.5%). The circulating G-types were G6, G8, and G10, while the circulating P-types were P[1], P[4], P[8], P[11], P[13] and P[14]. G10P[11] (37.5%) followed by G6P[14] (18.8%), and G6P[1] (12.5%) were the dominant G/P combinations circulating among calves in the study area. The circulating bovine RVA strains including human-like bovine (GxP[4] and GxP[8]) and porcine-like bovine (G8P[13]) P-genotypes identified in calves were closely related to RVA strains globally reported from bovine, human, caprine, porcine, and other hosts. Our data reveal that the prevalence of RVA in calves is significant with diverse genotypes circulating in the study area with a potential for zoonosis and/or reverse zoonosis. Hence, continuous surveillance of the circulating RVA genotypes is crucial to curb the RVA-associated morbidity and mortality in cattle and human populations.