Pathologic TNM staging is currently the best prognostic factor for non-small cell lung carcinoma (NSCLC). However, even in early-stage NSCLC, the recurrence rates after surgery range from 25% to 50%. The preoperative detection of circulating tumor cells (CTC) could be useful to tailor new therapeutic strategies in NSCLC. We assessed the presence of CTC in NSCLC patients undergoing surgery, using cytologic analyses, after their isolation by size of epithelial tumor cells (ISET method). The presence and the number of CTCs were considered and correlated with clinicopathologic parameters including patient follow-up.Of the 247 blood samples tested, 208 samples were from patients with resectable NSCLC and 39 from healthy subjects. The mean follow-up was 24 months. An image of detected cells with presumably nonhematologic features [initially defined as "circulating nonhematologic cells" (CNHC)] was recorded. The presence of CNHC was assessed blindly and independently by 10 cytopathologists, using cytologic criteria of malignancy on stained filters. The count of detected CNHCs was made for each filter.One hundred two of 208 (49%) patients showed CNHCs corresponding to CNHC with malignant cytopathologic features in 76 of 208 (36%) cases. CNHCs were not detected in the control group. A level of 50 or more CNHCs corresponding to the third quartile was associated with shorter overall and disease-free-survival, independently of disease staging, and with a high risk of recurrence and death in early-stage I + II-resectable NSCLC.A high percentage of NSCLC patients show preoperative detection of CNHC by the ISET method. The presence and level of 50 or more CNHCs are associated with worse survival of patients with resectable NSCLC.

Abstract Comparison of the efficacy of different enrichment methods for detection of circulating tumor cells (CTCs) before radical surgery is lacking in non‐small‐cell lung carcinoma (NSCLC) patients. Detection and enumeration of CTCs in 210 consecutive patients undergoing radical surgery for NSCLC were evaluated with the CellSearch Assay™ (CS), using the CellSearch Epithelial Cell Kit, and by the isolation by size of epithelial tumor (ISET) method, using double immunolabeling with anti‐cytokeratin and anti‐vimentin antibodies. CTCs were detected in 144 of 210 (69%) patients using CS and/or ISET and in 104 of 210 (50%) and 82 of 210 (39%) patients using ISET and CS, respectively. Using ISET, 23 of 210 (11%) patients had vimentin‐positive cells with cytological criteria of malignancy. Disease‐free survival (DFS) was worse for patients with CTCs compared to patients without CTCs detected by CS alone ( p < 0.0001; log rank = 30.59) or by ISET alone ( p < 0.0001; log rank = 33.07). The presence of CTCs detected by both CS and ISET correlated even better with shorter DFS at a univariate ( p < 0.0001; log rank = 42.15) and multivariate level (HR, 1.235; 95% CI, 1.056–1.482; p < 0.001). CS and ISET are complementary methods for detection of CTCs in preoperative radical surgery for NSCLC. CTC detection in resectable NSCLC patients using CS and/or ISET could be a prognostic biomarker of great interest and may open up new avenues into improved therapeutic strategies for lung carcinoma patients.

Emerging therapies for non–small cell lung cancer targeting c-Met overexpression have recently demonstrated promising results. However, the evaluation of c-Met expression can be challenging. We aimed to study the inter and intraobserver reproducibility of c-Met expression evaluation. One hundred ten cases with non–small cell lung cancer (40 biopsies and 70 surgical specimens) were retrospectively selected in a single laboratory (LPCE) and evaluated for c-Met expression. Six pathologists (4 seniors and 2 juniors) evaluated the H-score and made a 3-tier classification of c-Met expression for all cases, using conventional light microscopy (CLM) and whole slide imaging (WSI). The interobserver reproducibility with CLM gave global Cohen Kappa coefficients (ƙ) ranging from 0.581 (95% CI: 0.364-0.771) to 0.763 (95% CI: 0.58-0.92) using the c-Met 3-tier classification and H-score, respectively. ƙ was higher for senior pathologists and biopsy samples. The interobserver reproducibility with WSI gave a global ƙ ranging from 0.543 (95% CI: 0.33-0.724) to 0.905 (95% CI: 0.618-1) using the c-Met H-score and 2-tier classification (≥25% 3+), respectively. ƙ for intraobserver reproducibility between CLM and WSI ranged from 0.713 to 0.898 for the c-Met H-score and from 0.600 to 0.779 for the c-Met 3-tier classification. We demonstrated a moderate to excellent interobserver agreement for c-Met expression with a substantial to excellent intraobserver agreement between CLM and WSI, thereby supporting the development of digital pathology. However, some factors (scoring method, type of tissue samples, and expertise level) affect reproducibility. Our findings highlight the importance of establishing a consensus definition and providing further training, particularly for inexperienced pathologists, for c-Met immunohistochemistry assessment in clinical practice.