Antisense oligonucleotide-mediated alternative splicing has great potential for treatment of Duchenne muscular dystrophy (DMD) caused by mutations within nonessential regions of the dystrophin gene. We have recently shown in the dystrophic mdx mouse that exon 23, bearing a nonsense mutation, can be skipped after intramuscular injection of a specific 2′- O -methyl phosphorothioate antisense oligoribonucleotide (2OMeAO). This skipping created a shortened, but in-frame, transcript that is translated to produce near-normal levels of dystrophin expression. This expression, in turn, led to improved muscle function. However, because DMD affects muscles body-wide, effective treatment requires dystrophin induction ideally in all muscles. Here, we show that systemic delivery of specific 2OMeAOs, together with the triblock copolymer F127, induced dystrophin expression in all skeletal muscles but not in cardiac muscle of the mdx dystrophic mice. The highest dystrophin expression was detected in diaphragm, gastrocnemius, and intercostal muscles. Large numbers of fibers with near-normal level of dystrophin were observed in focal areas. Three injections of 2OMeAOs at weekly intervals enhanced the levels of dystrophin. Dystrophin mRNA lacking the targeted exon 23 remained detectable 2 weeks after injection. No evidence of tissue damage was detected after 2OMeAO and F127 treatment either by serum analysis or histological examination of liver, kidney, lung, and muscles. The simplicity and safety of the antisense protocol provide a realistic prospect for treatment of the majority of DMD mutations. We conclude that a significant therapeutic effect may be achieved by further optimization in dose and regime of administration of antisense oligonucleotide.

Defective clearance of apoptotic and foam cells achieved by arterial macrophage efferocytosis propels the progression of inflammatory atherosclerosis, but related molecular mechanisms in this process remain unclear. Herein, this study is engineered to probe into the mechanism of peroxisome-proliferator-activated receptor-γ coactivator-1α (PGC1α) on atherosclerosis.

Abstract Dystroglycanopathy is characterized by reduced or lack of matriglycan, a cellular receptor for laminin as well as other extracellular matrix proteins. Recent studies have delineated the glycan chain structure of the matriglycan and the pathway with key components identified. FKRP functions as ribitol-5-phosphate transferase with CDP-ribitol as the substrate for the extension of the glycan chain. Supplement of ribitol and ribose have been reported to increase the levels of CDP-ribitol in both cells and in muscles in vivo. Clinical trials with both ribitol and ribose have been reported for treating LGMD2I caused by mutations in the FKRP gene. Here we compared the comprehensive metabolite profiles of the skeletal muscle between ribitol-treated and ribose-treated FKRP mutant mice. The closely related pentose and pentitol show clearly differential impacts on metabolisms despite their similarity in enhancing the levels of CDP-ribitol and matriglycan synthesis. Supplement of ribitol changes lysophospholipid sub-pathway metabolite profiling with a trend towards normalization as reported in the muscle after AAV9-FKRP gene therapy. Ribose treatment significantly increases level of ribonate and elevates levels of advanced glycation end products. Further analysis is required to determine which metabolite is prudent to use for long-term daily treatment of dystroglycanopathies.