In this experiment, a rapid and highly sensitive ultra-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry (UPLC-MS/MS) technology was established and validated for the quantitation and pharmacokinetic analysis of eupafolin in rat plasma, utilizing licochalcone B as internal standard (IS). After liquid-liquid extraction of the analyte samples by ethyl acetate, chromatographic separation was achieved using a UPLC HSS T3 column under gradient elution conditions, with the mobile phase consisting of acetonitrile and water (with 0.1 % formic acid). Eupafolin was quantified by multiple reaction monitoring (MRM) in electrospray positive-ion mode (ESI+), employing the mass transition m/z 315.2 → 300.3 for eupafolin and m/z 285.4 → 270.3 for IS. Eupafolin demonstrated excellent linear relationship (r > 0.99) over the concentration range of 1.25-1250 ng/mL, with the lower limit of quantification (LLOQ) of the UPLC-MS/MS assay determined as 1.25 ng/mL. Method validation followed the bioanalytical method validation criteria outlined by the FDA. The accuracy of eupafolin ranged from 86.7 % to 111.2 %, and the precision was less than 12 %. The matrix effect was observed at 92.8 %-98.6 %, while the recoveries exceeded 83.2 %. The established UPLC-MS/MS assay was successfully employed for the pharmacokinetic evaluation of eupafolin in rats. The half-lives (t

Antioxidant therapy aimed at reducing excessive local oxidative stress is one of the most important strategies for promoting diabetic wound repair. The reversible transformation of Ce

Abstract Objective The levels of fraxetin, fraxin, and dimethylfraxetin in rat plasma to be measured using an ultra-performance liquid chromatography tandem mass-spectrometry (UPLC–MS/MS) technique and applied to their pharmacokinetics and bioavailability. Methods The protein precipitation technique was applied to the plasma preparation using acetonitrile and methanol (9:1, v/v). At a flow rate of 0.4 mL min −1 , the elution time was 6 min. The mobile phase consisted of acetonitrile-water with 0.1% formic acid, and the chromatographic column was UPLC HSS T3 (50 mm × 2.1 mm, 1.8 μm). Quantitative analysis was conducted using multiple reaction monitoring (MRM) mode and detection was performed using electrospray ionization (ESI) positive ion mode. In each group, six rats were treated with fraxetin, fraxin, and dimethylfraxetin either orally (5 mg kg −1 ) or intravenously (1 mg kg −1 ). Results The calibration curves showed good linearity in the range of 2–4,000 ng mL −1 , where r was greater than 0.99. The bioavailability of dimethylfraxetin, fraxin, and fraxetin was determinated to be 19.7, 1.4, and 6.0%. Conclusion The established UPLC-MS/MS method for determining the levels of these three compounds in rat plasma was successfully applied to the pharmacokinetics of dimethylfraxetin, fraxin, and fraxetin, and the bioavailability was calculated.

Abstract The present study examined the pharmacokinetics of IMM‐H012 in rat plasma, utilizing ultra‐performance liquid chromatography‐tandem mass spectrometry (UPLC‐MS/MS). Internal standard cilostazol was employed, and plasma samples were processed using acetonitrile precipitation. A mobile phase (acetonitrile–0.1% formic acid in water) with gradient elution was used to achieve chromatographic separation using a UPLC BEH C18 column. In multiple reaction monitoring mode, electrospray ionization MS/MS was utilized in positive ionization mode. Based on findings, the lower limit of quantification was 2 ng/mL, and the linearity of IMM‐H012 in rat plasma was found to be acceptable within the range of 2–2000 ng/mL ( R 2 > 0.995). The intra‐day and inter‐day precision relative standard deviation was less than 14% of IMM‐H012 in rat plasma. The matrix effect was within the range of 102%–107%, and the accuracy ranged from 92% to 113%. Pharmacokinetics of IMM‐H012 in rats after oral administration were successfully studied using UPLC‐MS/MS.

Abstract Febrifugine, a potent quinazolinone compound derived from the Chinese herb Chang Shan (Dichroa febrifuga), exhibits diverse biological activities and has demonstrated anti-tumor effects by functioning as focal adhesion kinase (FAK) inhibitors. In this study, our objective was to establish a quantitative UPLC-MS/MS method and investigate the pharmacokinetic characteristics of febrifugine in rats following intravenous and oral administration routes. The rat tail vein was used for the collection of blood samples at designated time intervals following intravenous (2.0 mg kg −1 ) and oral (6.0 mg kg −1 ) administrations. Plasma samples were pretreated with acetonitrile as a protein precipitant and methylcytisine as an internal standard. Febrifugine concentration in rat plasma was determined using the UPLC-MS/MS method, and pharmacokinetic parameters were calculated using drug and statistics (DAS) software version for statistical analysis. The linear range of febrifugine in rat plasma was 1.5–1,500 ng mL −1 , meeting the precision, recovery, and stability requirements for determination purposes. Febrifugine had a half-life (t 1/2 ) of 3.2 ± 1.6 h after administered via intravenous route, while t 1/2 was 2.6 ± 0.5 h after oral administration. The developed UPLC-MS/MS method is facile to operate while adhering to rigorous methodological verification standards, rendering it suitable for investigating the pharmacokinetics of febrifugine; and bioavailability was determined as 45.8%.