Chronic lymphocytic leukemia (CLL) is a malignancy of B cells of unknown etiology. Deletions of the chromosomal region 13q14 are commonly associated with CLL, with monoclonal B cell lymphocytosis (MBL), which occasionally precedes CLL, and with aggressive lymphoma, suggesting that this region contains a tumor-suppressor gene. Here, we demonstrate that deletion in mice of the 13q14-minimal deleted region (MDR), which encodes the DLEU2/miR-15a/16-1 cluster, causes development of indolent B cell-autonomous, clonal lymphoproliferative disorders, recapitulating the spectrum of CLL-associated phenotypes observed in humans. miR-15a/16-1-deletion accelerates the proliferation of both human and mouse B cells by modulating the expression of genes controlling cell-cycle progression. These results define the role of 13q14 deletions in the pathogenesis of CLL.

Mutations in the gene encoding the KMT2D (or MLL2) methyltransferase are highly recurrent and occur early during tumorigenesis in diffuse large B cell lymphoma (DLBCL) and follicular lymphoma (FL). However, the functional consequences of these mutations and their role in lymphomagenesis are unknown. Here we show that FL- and DLBCL-associated KMT2D mutations impair KMT2D enzymatic activity, leading to diminished global H3K4 methylation in germinal-center (GC) B cells and DLBCL cells. Conditional deletion of Kmt2d early during B cell development, but not after initiation of the GC reaction, results in an increase in GC B cells and enhances B cell proliferation in mice. Moreover, genetic ablation of Kmt2d in mice overexpressing Bcl2 increases the incidence of GC-derived lymphomas resembling human tumors. These findings suggest that KMT2D acts as a tumor suppressor gene whose early loss facilitates lymphomagenesis by remodeling the epigenetic landscape of the cancer precursor cells. Eradication of KMT2D-deficient cells may thus represent a rational therapeutic approach for targeting early tumorigenic events.

Diffuse large B cell lymphomas (DLBCL) derive from germinal center (GC) B cells and display chromosomal alterations deregulating the expression of BCL6, a transcriptional repressor required for GC formation. To investigate the role of BCL6 in DLBCL pathogenesis, we have engineered mice that express BCL6 constitutively in B cells by mimicking a chromosomal translocation found in human DLBCL. These mice display increased GC formation and perturbed post-GC differentiation characterized by a decreased number of post-isotype switch plasma cells. Subsequently, these mice develop a lymphoproliferative syndrome that culminates with the development of lymphomas displaying features typical of human DLBCL. These results define the oncogenic role of BCL6 in the pathogenesis of DLBCL and provide a faithful mouse model of this common disease.

Inactivating mutations of the CREBBP acetyltransferase are highly frequent in diffuse large B-cell lymphoma (DLBCL) and follicular lymphoma (FL), the two most common germinal center (GC)-derived cancers. However, the role of CREBBP inactivation in lymphomagenesis remains unclear. Here, we show that CREBBP regulates enhancer/super-enhancer networks with central roles in GC/post-GC cell fate decisions, including genes involved in signal transduction by the B-cell receptor and CD40 receptor, transcriptional control of GC and plasma cell development, and antigen presentation. Consistently, Crebbp-deficient B cells exhibit enhanced response to mitogenic stimuli and perturbed plasma cell differentiation. Although GC-specific loss of Crebbp was insufficient to initiate malignant transformation, compound Crebbp-haploinsufficient/BCL2-transgenic mice, mimicking the genetics of FL and DLBCL, develop clonal lymphomas recapitulating the features of the human diseases. These findings establish CREBBP as a haploinsufficient tumor-suppressor gene in GC B cells and provide insights into the mechanisms by which its loss contributes to lymphomagenesis.Significance: Loss-of-function mutations of CREBBP are common and early lesions in FL and DLBCL, suggesting a prominent role in lymphoma initiation. Our studies identify the cellular program by which reduced CREBBP dosage facilitates malignant transformation, and have direct implications for targeted lymphoma therapy based on drugs affecting CREBBP-mediated chromatin acetylation. Cancer Discov; 7(3); 322-37. ©2017 AACR.This article is highlighted in the In This Issue feature, p. 235.

The myocyte enhancer factor 2B (MEF2B) transcription factor is frequently mutated in germinal center (GC)-derived B-cell lymphomas. Its ammino (N)-terminal mutations drive lymphomagenesis by escaping interaction with transcriptional repressors, while the function of carboxy (C)-terminal mutations remains to be elucidated. Here, we show that MEF2B C-tail is physiologically phosphorylated at specific residues and phosphorylation at serine (S)324 is impaired by lymphoma-associated mutations. Lack of phosphorylation at S324 enhances the interaction of MEF2B with the SWI/SNF chromatin remodeling complex, leading to higher transcriptional activity. In addition, these mutants show an increased protein stability due to impaired interaction with the CUL3/KLHL12 ubiquitin complex. Mice expressing a phosphorylation-deficient lymphoma-associated MEF2B mutant display GC enlargement and develop GC-derived lymphomas, when crossed with Bcl2 transgenic mice. These results unveil converging mechanisms of action for a diverse spectrum of MEF2B mutations, all leading to its dysregulation and GC B-cell lymphomagenesis. N-terminal mutations in the transcription factor Myocyte Enhancer Factor 2B (MEF2B) are reported to drive lymphomagenesis. Here, the authors show that lymphoma-associated C-terminal mutations in MEF2B impair its phosphorylation, leading to increased stability and transcriptional activity to promote B-cell lymphomagenesis.